Interested Article - Кинетопласт
- 2021-09-06
- 2
Кинетопла́ст ( англ. kinetoplast ) — сеть молекул (к ДНК ), находящаяся в гигантских митохондриях и содержащая множество копий митохондриального генома . Чаще всего кинетопласт имеет форму диска, хотя из этого правила известны и исключения. Кинетопласт имеется только у простейших класса кинетопластиды . Вариации структуры кинетопласта могут отражать филогенетические связи внутри кинетопластид . Кинетопласт обычно находится вблизи базального тельца жгутика , поэтому, вероятно, прочно связан с цитоскелетом . Кинетопласт можно легко визуализировать в клетках при помощи окрашивания DAPI .
Структура
Кинетопласт содержит ДНК в двух формах: и максикольца. Максикольца содержат от 20 до 40 тысяч пар оснований (килобаз, кб) и имеются в кинетопласте в числе нескольких десятков. Один кинетопласт содержит несколько тысяч миниколец, содержащих 0,5—1 кб. Максикольца кодируют белки , необходимые для функционирования гигантской митохондрии, в которой находится кинетопласт. Единственная известная на данный момент функция миниколец заключается в регуляции экспрессии максиколец путём образования направляющих РНК . Максикольца и миникольца катенированы друг с другом, образуя плоскую сеть, похожую на кольчугу . При репликации кДНК сначала происходит разъединение колец, а в дочерних кинетопластах они снова катенируются . Структура кДНК наиболее изучена у , которая представляет собой катенированный диск из мини- и максиколец, большинство из которых не сверхспирализованы . С внешней стороны к кДНК непосредственно примыкают два белковых комплекса , повернутые на 180° относительно друг друга и участвующие в репликации миниколец .
У разных представителей кинетопластид кинетопласт и его ДНК имеют разное строение. Известны следующие варианты, отличающиеся от описанной выше типичной схемы :
- про-кДНК : кинетопласт представляет собой вытянутую, похожую на пучок нитей структуру, расположенную в матриксе митохондрии проксимальнее базального тельца жгутика. В противоположность типичному строению кДНК, лишь небольшой процент колец зацеплены друг за друга. При этом мини- и максикольца находятся в расслабленном (не суперскрученном ) состоянии. Такое строение описано у , , syn. , и ;
- поли-кДНК : строение кинетопласта сходно с предыдущим вариантом, содержит мало сцепленных колец и не содержит суперскрученных. Отличительная особенность — этот тип кинетопласта не представляет собой единого тельца, а распределен в виде отдельных скоплений ДНК по всему матриксу митохондрии. Этот вариант обнаружен у ( комменсала , живущего в кишечнике термитов ), Dismastigella mimosa (свободноживущей кинетопластиды) и ( паразит кишечника асцидий ) ;
- пан-кДНК : как и предыдущие типы, содержит небольшой процент сцепленных колец, но может содержать сверхспирализованные миникольца. Пан-кДНК занимает почти весь митохондриальный матрикс , а не разбросана по нему в виде отдельных скоплений. Обнаружена у (паразит, обитающий в улиток ), и (паразит рыб);
- мега-кДНК : распределена равномерно по матриксу митохондрии, при этом не содержит миниколец. Последовательности, сходные с таковыми миниколец других кинетопластов, тандемно объединены в более крупные молекулы длиной около 200 кб. Мега-кДНК или сходные по структуре варианты обнаружены у (паразит рыб ) и sp . (паразит китов ) .
Репликация
Удвоение кинетопласта происходит одновременно с удвоением соседнего жгутика сразу перед началом репликации ядерной ДНК. В типичном кинетопласте (как у Crithidia fasciculata ) инициация репликации происходит при размыкании миниколец кДНК . Свободные миникольца выходят в пространство между кинетопластом и внутренней митохондриальной мембраной , известное как кинетофлагеллярная зона . Далее миникольца посредством неизвестного механизма перемещаются в противоположно расположенные антиподиальные белковые комплексы, которые содержат эндонуклеазу , хеликазу , ДНК-полимеразу , и ДНК-лигазу , которые устраняют ошибки репликации в только что удвоенных миникольцах . Только что реплицированные миникольца можно отличить от зрелых миниколец по наличию узкой щели. Миникольца, не подвергавшиеся удвоению, остаются ковалентно замкнутыми. Сразу после репликации все новоудвоенные миникольца присоединяются к сети кДНК, и их щели частично репарируются .
Пока продолжается репликация миниколец, сеть кДНК непрерывно вращается вокруг центральной оси диска, чтобы не допустить присоединения новых миниколец к материнскому кинетопласту. Считается, что вращение непосредственно связывается с удвоением соседнего жгутика, поскольку дочернее базальное тельце вращается вокруг материнского в такт с вращением кинетопласта. Благодаря вращению миникольца дочернего кинетопласта соединяются в спираль и постепенно смещаются к центру диска, по мере того как другие миникольца отщепляются от материнской кДНК и отправляются в кинетофлагеллярную зону для репликации .
Механизм удвоения максиколец не изучен так подробно, как миниколец. Удалось выявить структуру под названием nabelschnur (с немецкого « пуповина »), которая связывает дочернюю кДНК с исходной до их разделения. С помощью FISH удалось доказать, что nabelschnur состоит из максиколец кДНК .
В процессе репликации кинетопласта выделяют пять стадий, каждая из которых связана с удвоением соседнего жгутика. 1. Стадия I . Кинетопласт не начал реплицироваться, в нём нет антиподиальных белковых комплексов. 2. Стадия II . В кинетопласте начинают выявляться антиподиальные комплексы. Начинается удвоение базального тельца жгутика. 3. Стадия III . Начинается отделение нового жгутика, кинетопласт приобретает двухчастный облик. 4. Стадия IV . Дочерние кинетопласты практически разделены и связываются только nabelschnur. 5. Стадия V . Дочерние кинетопласты окончательно разъединяются, nabelschnur разрушается. Структура кинетопластов идентична таковой на первой стадии .
Репарация
Trypanosoma cruzi способна осуществлять репарацию нуклеотидов и в ядерной ДНК, и в кДНК, которые были повреждены активными формами кислорода , образовавшимися в организме хозяина в ходе инфекции . клеток T. cruzi устраняет окислительные повреждения ДНК с помощью эксцизионной репарации оснований . Вероятно, этот фермент устраняет окислительные повреждения кДНК, вызванные генотоксическим стрессом, во время её репликации .
Примечания
- ↑ Shapiro T. A. , Englund P. T. (англ.) // Annual Review Of Microbiology. — 1995. — Vol. 49 . — P. 117—143 . — doi : . — .
- ↑ Shlomai J. (англ.) // Current Molecular Medicine. — 2004. — September ( vol. 4 , no. 6 ). — P. 623—647 . — .
- ↑ Lukes J. , Guilbride D. L. , Votýpka J. , Zíková A. , Benne R. , Englund P. T. (англ.) // Eukaryotic Cell. — 2002. — August ( vol. 1 , no. 4 ). — P. 495—502 . — .
- ↑ Gluenz E. , Povelones M. L. , Englund P. T. , Gull K. (англ.) // Molecular and Cellular Biology. — 2010. — 20 December ( vol. 31 , no. 5 ). — P. 1012—1021 . — ISSN . — doi : .
- ↑ Torri, A., et al. DNA Replication in Eukaryotic Cells . Cold Spring Harbor Laboratory Press. 1996. pages=1029-42. ISBN 0-87969-459-9
- ↑ Schamber-Reis B. L. , Nardelli S. , Régis-Silva C. G. , Campos P. C. , Cerqueira P. G. , Lima S. A. , Franco G. R. , Macedo A. M. , Pena S. D. , Cazaux C. , Hoffmann J. S. , Motta M. C. , Schenkman S. , Teixeira S. M. , Machado C. R. (англ.) // Molecular And Biochemical Parasitology. — 2012. — June ( vol. 183 , no. 2 ). — P. 122—131 . — doi : . — .
- 2021-09-06
- 2