Interested Article - Ксантофилловый цикл

Ксантофилловый (виолаксантиновый) цикл. VDE — виолаксантин деэпоксидаза, ZE — зеаксантин эпоксидаз, AscH — восстановленная форма аскорбата, DHA — дегидроаскорбат.

Ксантофилловый цикл , или виолаксантиновый цикл , в случае высших растений, выполняет функцию защиты фотосинтетического аппарата от избытка энергии при повышенной инсоляции. Он позволяет избежать фотоингибирования, значительно увеличив нефотохимическое тушение . Цикл включает в себя ферментативные взаимопревращения между виолаксантином и зеаксантином (промежуточный продукт — ) .

Взаимопревращение ксантофиллов

Виолаксантиновый цикл протекает в минорных субъединицах светособирающего комплекса фотосистемы II (белки CP29, CP26, CP23, CP22 и др.). При высокой интенсивности света вследствие активной работы ЭТЦ фотосинтеза происходит закисление люмена тилакоидов . При падении pH до 5,0 активируются фермент деэпоксидаза, которая с люменальной стороны мембраны осуществляет восстановление эпоксидных групп виолоксантина, используя в качестве восстановителя аскорбиновую кислоту . Двукратное восстановление приводит к образованию зеаксантина, который и выполняет фотопротекторную функцию. При снижении интенсивности освещения, начинает преобладать обратная реакция катализируемая эпоксидазой, расположенной со стромальной стороны мембраны с pH оптимумом 7,5. Для введения эпоксидных групп необходим молекулярный кислород и восстановитель ( НАДФН ). В результате образуется виолаксантин, который может выполнять роль светособирающего пигмента .

Антенная функция

Ксантофиловый цикл высших растений и водорослей играет важную роль в регуляции перераспределения энергии света между виолаксантином , зеаксантином и хлорофиллом а . Роль фотопротектора в цикле выполняет зеаксантин, содержащий сопряжённую систему из 11 двойных связей (у виолоксантина всего 9 сопряженных связей). Увеличение сопряжения приводит к снижению энергии первого синглетного возбужденного уровня пигмента. Для виолоксантина характерно поглощение при 657 нм, а для зеаксантина при 704 нм (поглощение хлорофилла при 680 нм). Таким образом, поскольку энергия возбужденного состояния зеаксантина ниже энергии возбужденного состояния хлорофилла а, возможен прямой синглет-синглетный перенос энергии от возбуждённого хлорофилла (S 1 ) к зеаксантину. Поглощение избыточной энергии возбуждения хлорофилла зеаксантином защищает фотосинтетический аппарат. С другой стороны энергия возбуждённого S 1 -состояния молекулы виолоксантина выше чем у хлорофилла а, и поэтому виолоксантин может стать донором энергии для хлорофилла. В результате виолоксантин играет роль антенны , собирающей фотоны и переносящей их на хлорофилл.

Таким образом, при низком освещении ксантофиллы действуют преимущественно как светособирающие пигменты, а при высоком помогают рассеять избыточную энергию и защитить растение от фотоингибирования. Этот же механизм помогает подготовить растение к смене дня и ночи.

Защитная функция

Длинные молекулы каротиноидов с большим количеством сопряжённых связей особенно эффективно преобразуют энергию возбуждения в тепловую через внутреннюю конверсию . Благодаря большому количеству сопряжённых двойных связей, которые могут достаточно значительно изменять свою длину, молекулы каротиноидов совершают постоянные колебания сжимания разжимания наподобие гармошки. Такое поведение обеспечивает быструю диссипацию энергии в тепло . Это же свойство позволяет ксантофиллам и каротиноидам эффективно тушить активные , синглетные формы кислорода и возбуждённого, триплетного хлорофилла .

Кроме того, конформационные изменения в молекуле виолоксантина протекающие при деэпоксидации приводят к тому, что зеаксантин легче образует агрегаты. Образование агрегатов зеаксантина в минорных белках ССК II приводит к блокированию миграции энергии от внешних антенн ССКII к реакционному центру ФСII и тепловой диссипации энергии возбуждения. Известно, что при ярком солнечном освещении растения рассеивают в форме тепла от 50 до 70 % энергии поглощённых квантов . Поэтому именно тепловая диссипация энергии играет ключевую роль в защите фотосинтетического аппарата (считается, что вклад реакции Мелера и фотодыхания значительно меньше) .

При исследовании шпината было обнаружено, что при ярком освещении увеличение концентрации зеаксантина превосходит снижение концентрации виолоксантина. Возможно, такие условия побуждают растения к более активному синтезу зеаксантина из β-каротина .

Действие на мембрану

Также зеаксантин выполняет важную структурную роль в мембранах тилакоидов. При повышенном освещении ксантофиллы распределяются между светособирающими комплексами и липидным бислоем . Поскольку зеаксантин имеет две гидрофильные -OH группы, он располагается поперек бислоя, тем самым увеличивая вязкость мембраны. Увеличение вязкости мембраны благодаря зеаксантину и некоторым терпеноидам ( α-токоферол ) снижает её проницаемость для кислорода и защищает липиды от перекисного окисления его активными формами .

Другие подобные циклы

Ксантофиловый цикл диатомовых и динофитовых водорослей. DDE = диадиноксантин-деэпоксидаза; DEP = диатоксантин-эпоксидаза; AscH = аскорбат; DHA = дегидроаскорбат

У диатомовых водорослей и динофлагеллят ксантофиловый цикл состоит из пигмента диадиноксантина , который в условиях избыточного освещения превращается в диатоксантин у диатомовых или диноксантин у динофлагеллят .

У некоторых высших растений (например из рода Инга ) кроме виолаксантинового цикла обнаружен дополнительный лютеиновый цикл. В ходе этого цикла происходит обратимое превращения лютеин-5,6-эпоксида на ярком свету в лютеин , что также по-видимому способствует защите фотосинтетического аппарата . Этот цикл есть у некоторых таксономически далеко отстоящих групп, но он консервативен и сохраняется в пределах семейства и рода.

Примечания

  1. Falkowski, P. G. & J. A. Raven, 1997, Aquatic photosynthesis. Blackwell Science, 375 pp
  2. Taiz, Lincoln and Eduardo Zeiger. 2006. Plant Physiology . Sunderland, MA: Sinauer Associates, Inc. Publishers, Fourth edition, 764 pp
  3. , с. 143.
  4. , с. 145.
  5. Wright. . Дата обращения: 6 января 2016. Архивировано из 24 сентября 2019 года.
  6. , с. 146.
  7. Jeffrey, S. W. & M. Vesk, 1997. Introduction to marine phytoplankton and their pigment signatures. In Jeffrey, S. W., R. F. C. Mantoura & S. W. Wright (eds.), Phytoplankton pigments in oceanography, pp 37-84. — UNESCO Publishing, Paris.
  8. MATSUBARA SHIZUE , KRAUSE G. HEINRICH , SELTMANN MARTIN , VIRGO AURELIO , KURSAR THOMAS A. , JAHNS PETER , WINTER KLAUS. // Plant, Cell & Environment. — 2008. — Апрель ( т. 31 , № 4 ). — С. 548—561 . — ISSN . — doi : . [ ]
  9. García-Plazaola, JI. et al . (2007): The lutein epoxide cycle in higher plants: its relationships to other xanthophyll cycles and possible functions . In: Functional Plant Biology 34 (9); 759—773; doi : .
  10. Bungard, RA. et al . (1999): Unusual carotenoid composition and a new type of xanthophyll cycle in plants . In: Proc Natl Acad Sci USA 96 (3); 1135—1139; ; PMC

Литература

  • Фотосинтез. Физиолого-экологические и биохимические аспекты / А.Т Мокроносов, В. Ф. Гавриленко, Т. В. Жигалова; под ред. И. П. Ермакова. — М. : «Академия», 2006. — 448 с. — ISBN 5-7695-2757-9
  • Физиология растений / Под ред. И. П. Ермакова. — М. : Академия, 2005. — 634 с. — ISBN 978-5-7695-36-88-5 .
  • Хелдт Г. В. Биохимия растений. — М. : БИНОМ. Лаборатория знаний, 2011. — 471 с. — ISBN 978-5-94774-795-9 .
Источник —

Same as Ксантофилловый цикл