Interested Article - Глиоксилатный цикл

Схема глиоксилатного цикла

Глиоксила́тный цикл , или глиоксила́тный шунт анаболический путь , имеющийся у растений , бактерий , протистов и грибов , представляет собой видоизменённый цикл трикарбоновых кислот . Глиоксилатный цикл служит для превращения ацетил-СоА в сукцинат , который далее используется для . У микроорганизмов он обеспечивает утилизацию простых углеродных соединений в качестве источника углерода , когда более сложные источники, например, глюкоза , недоступны , а также может считаться одной из цикла трикарбоновых кислот, восполняющей количества сукцината и малата . Считается, что у животных глиоксилатный цикл отсутствует (подтверждённое исключение составляют нематоды на ранних стадиях своего эмбриогенеза ), однако в последние годы в некоторых тканях животных были обнаружены ключевые ферменты цикла — и .

Ферменты и реакции глиоксилатного цикла были открыты Хансом Корнбергом и Хансом Адольфом Кребсом .

Механизм

У растений, некоторых беспозвоночных и некоторых микроорганизмов (в том числе бактерии Escherichia coli и дрожжей ) ацетат может служить как источником энергии , так и предшественником фосфоенолпирувата , который далее используется для синтеза углеводов . У этих организмов ферменты глиоксилатного цикла катализируют превращение ацетата в сукцинат:

2 Ацетил-СоА + NAD + + 2H 2 O → сукцинат + 2СоА + NADH + H + .

В ходе глиоксилатного цикла ацетил-СоА соединяется с оксалоацетатом с образованием цитрата , а цитрат превращается в изоцитрат , как и в цикле трикарбоновых кислот. Однако следующим шагом является не отщепление от изоцитрата водорода ферментом , а расщепление изоцитрата на сукцинат и глиоксилат под дейстствием изоцитратлиазы . Механизм этой показан ниже:

Глиоксилат после этого конденсируется со второй молекулой ацетил-СоА, образуя малат под действием малатсинтазы , а сукцинат покидает цикл. Малат далее окисляется в оксалоацетат, который может соединиться с новой молекулой ацетил-СоА и начать новый оборот цикла. В ходе каждого оборота глиоксилатного цикла используются две молекулы ацетил-СоА и образуется одна молекула сукцината, который в дальнейшем может использоваться в биосинтетических процессах. Сукцинат может быть преобразован через фумарат и малат в оксалоацетат, который далее может превратиться в фосфоенолпируват под действием фосфоенолпируваткарбоксикиназы , а фосфоенолпируват в ходе глюконеогенеза даёт глюкозу. У животных глиоксилатный цикл не происходит, и в связи с этим они неспособны получать глюкозу из липидов (ацетил-СоА образуется при β-окислении жирных кислот ) .

Функции у различных организмов

Растения

Глиоксисома

У растений ферменты глиоксилатного цикла находятся в мембраносвязанных органеллах — глиоксисомах , представляющих собой специализированные пероксисомы (названы по протекающему в них циклу ). Ферменты, одновременно участвующие и в цикле трикарбоновых кислот, и в глиоксилатном цикле, имеют по два изофермента , один из которых локализуется в митохондриях , а другой — в глиоксисомах. Глиоксисомы не присутствуют постоянно во всех растительных тканях . Они образуются в богатых липидами семенах при их прорастании , ещё до того, как развивающееся растение сможет само образовывать глюкозу в ходе фотосинтеза . Кроме ферментов глиоксилатного цикла, в глиоксисомах находятся все ферменты, необходимые для деградации жирных кислот, запасённых в семенах. Ацетил-СоА, образующийся при β-окислении жирных кислот, превращается в сукцинат в ходе глиоксилатного цикла, и сукцинат транспортируется в митохондрии, где он вовлекается в цикл трикарбоновых кислот и превращается в малат. Цитозольный изофермент малатдегидрогеназы окисляет малат до оксалоацетата, который в свою очередь может превратиться в фосфоенолпируват. Последний вовлекается в глюконеогенез и даёт в конечном итоге глюкозу. Таким образом, прорастающее семя может переводить углерод, запасённый в липидах, в глюкозу .

Грибы и микроорганизмы

У грибов ферменты глиоксилатного цикла локализуются в пероксисомах. У некоторых патогенных грибов глиоксилатный цикл может служить для совершенно других целей. Концентрация двух ключевых ферментов цикла — изоцитратлиазы и малатсинтазы — значительно возрастает при контакте гриба с человеком , которого этот гриб поражает. У некоторых видов таких грибов мутанты , лишённые изоцитратлиазы, имеют сниженную вирулентность по сравнению с диким типом , как показали исследования на мышах . Причины такой связи в настоящий момент исследуются, однако можно заключить, что глиоксилатный цикл необходим для поддержания вирулентности этих патогенов .

Согласно новейшим данным, у растений и грибов ферменты глиоксилатного цикла локализованы не только внутри глиоксисомы: некоторые из них находятся снаружи, поэтому протекание глиоксилатного цикла включает транспорт некоторых его промежуточных соединений через мембрану пероксисомы .

Благодаря наличию глиоксилатного цикла некоторые микроорганизмы могут расти в среде, содержащей ацетат или жирные кислоты в качестве единственного источника углерода .

Животные

Принято считать, что животные неспособны к осуществлению глиоксилатного цикла, поскольку до недавнего времени не было никаких доказательств наличия у них двух ключевых ферментов цикла — изоцитратлиазы и малатсинтазы. Однако некоторые исследования показывают, что этот цикл имеется у некоторых, если не всех, позвоночных . В частности, некоторые исследования показали, что компоненты глиоксилатного цикла присутствуют в больших количествах в печени курицы . Эти и подобные им данные дают основания предполагать, что теоретически глиоксилатный цикл может осуществляться и более сложно организованными позвоночными . Другие исследования приводят доказательства того, что глиоксилатный цикл имеется у некоторых насекомых и морских беспозвоночных, а также нематод (в последнем случае наличие глиоксилатного цикла чётко подтверждено). Впрочем, другие исследования такие выводы опровергают . По поводу наличия цикла у млекопитающих также нет единого мнения: например, в одной работе указывается, что глиоксилатный цикл активен у медведей в зимней спячке , однако более поздние исследования оспаривают этот вывод . С другой стороны, в геномах плацентарных млекопитающих не было идентифицировано ни одного гена , который кодировал бы изоцитратлиазу и малатсинтазу, хотя, по-видимому, малатсинтаза может быть активна у неплацентарных млекопитающих и других позвоночных . Более того, предполагается, что гены, кодирующие эти ферменты, у млекопитающих находятся в виде псевдогенов , то есть такие гены не совершенно отсутствуют у млекопитающих, а лишь находятся в «выключенном» состоянии . Возможно, в регуляцию глиоксилатного цикла у позвоночных вовлечён витамин D .

Впрочем, в отсутствии глиоксилатного цикла в клетках млекопитающих есть и свои выгоды. Наличие глиоксилатного цикла у некоторых патогенных микроорганизмов и отсутствие его у людей даёт возможности для создания антибиотиков , блокирующих это цикл: они были бы губительны для зависимых от глиоксилатного цикла микроорганизмов и при этом безвредны для людей .

Регуляция

Внешние изображения

В прорастающих семенах ферментативные превращения дикарбоновых и трикарбоновых кислот происходят в трёх внутриклеточных компартментах: митохондриях, глиоксисомах и цитозоле. Между этими компартментами существует постоянный обмен метаболитами (см. внешнее изображение) .

Углеродный скелет оксалоацетата из цикла трикарбоновых кислот (протекает в митохондриях) переносится в глиоксисомы в форме аспартата . Там аспартат превращается в оксалоацетат, который конденсируется с ацетил-СоА, образовавшимся при окислении жирных кислот. Образующийся при этом цитрат под действием аконитазы переводится в изоцитрат, который далее распадается на глиоксилат и сукцинат под действием изоцитратлиазы. Сукцинат возвращается в митохондрию, где он вовлекается в цикл трикарбоновых кислот и превращается в малат, который переносится в цитоплазму и под действием цитозольной малатдегидрогеназы окисляется в оксалоацетат. В ходе глюконеогенеза оксалоацетат превращается в гексозы и сахарозу , которые могут доставляться в растущие корни и побег . Таким образом, во всех этих превращениях задействованы 4 различных биохимических процесса: окисление жирных кислот до ацетил-СоА (в глиоксисомах), глиоксилатный цикл (в глиоксисомах), цикл трикарбоновых кислот (в митохондрии) и глюконеогенез (в цитозоле) .

Наличие общих метаболитов у этих процессов требует их координированной регуляции. Важнейшим из этих соединений является изоцитрат, служащий «точкой расхождения» глиоксилатного цикла и цикла трикарбоновых кислот. Изоцитратдегидрогеназа регулируется при помощи ковалентных модификаций: специфическая протеинкиназа фосфорилирует её и тем самым инактивирует. Эта инактивация приводит к тому, что изоцитрат не может далее участвовать в цикле трикарбоновых кислот и направляется в глиоксилатный цикл, где он становится предшественником для синтеза глюкозы. Фосфопротеинфосфатаза удаляет фосфорильную группу с изоцитратдегидрогеназы, вновь активируя фермент, и большая часть изоцитрата направляется в цикл трикарбоновых кислот, где из него извлекается энергия. Регуляторные ферментативные активности протеинкиназы и фосфопротеинфосфатазы осуществляются одним полипептидом .

Некоторые бактерии, в том числе E. coli , имеют в цитозоле полный набор ферментов гликосилатного цикла и цикла трикарбоновых кислот и поэтому могут расти на ацетате как единственном источнике углерода и энергии. Фосфопротеинфосфатаза, активирующая изоцитратдегидрогеназу, стимулируется промежуточными соединениями цикла трикарбоновых кислот и гликолиза , которые служат индикаторами того, что клетка в достаточной мере обеспечена энергией. Те же метаболиты подавляют протеинкиназную активность этого регуляторного полипептида. Поэтому накопление промежуточных продуктов центральных путей, обеспечивающих клетку энергией, свидетельствующее о нехватке энергии, активирует изоцитратдегидрогеназу. Когда концентрация этих веществ падает, свидетельствуя о достаточном снабжении исходными продуктами цикла трикарбоновых кислот, изоцитратдегидрогеназа инактивируется протеинкиназой .

Те же соединения гликолиза и цикла трикарбоновых кислот, которые активируют изоцитратдегидрогеназу, являются аллостерическими ингибиторами изоцитратлиазы. Когда скорость энергетического обмена достаточно высока, чтобы поддерживать концентрацию промежуточных соединений глиоксилатного цикла и цикла трикарбоновых кислот низкой, изоцитратдегидрогеназа инактивирована, а ингибирование изоцитратлиазы прекращается, и изоцитрат вовлекается в глиоксилатный цикл, где он будет использован для биосинтеза углеводов, аминокислот и других клеточных компонентов .

Биоинженерия

В настоящее время большой интерес для биоинженеров представляет внедрение в млекопитающих тех метаболических путей, которые у них от природы отсутствуют. Одним из таких путей, которые биоинженеры пробовали внедрить в клетки млекопитающих, был глиоксилатный цикл. Интерес к нему был вызван увеличивающимися объёмами получения овечьей шерсти, для которого необходимо большое количество глюкозы. Если бы удалось внедрить это цикл овцам, то огромные запасы ацетата, имеющиеся в клетках, были бы использованы для получения глюкозы, а это, в свою очередь, позволило бы увеличить объёмы получаемой овечьей шерсти .

Из ДНК E. coli были выделены и секвенированы два гена, необходимых для глиоксилатного цикла: AceA, кодирующий изоцитратлиазу, и AceB, кодирующий малатсинтазу . После этого эти гены можно было успешно вставить в ДНК клеток культуры тканей млекопитающих, где они бы транскрибировались и транслировались в соответствующие ферменты без всякого вреда для самой клетки, обеспечивая тем самым возможность протекания глиоксилатного цикла. Однако внедрить таким образом этот путь в трансгенных мышей оказалось непросто. Хотя эти гены и экспрессировались в клетках печени и тонкой кишки , уровень их экспрессии был невысок и нестабилен. Чтобы решить эту проблему, можно было бы слить эти гены с промоторами, чтобы увеличить уровень их экспрессии и сделать её возможной и в таких клетках, как эпителиальные .

Однако попытки внедрения цикла в более сложно организованных животных, в частности, овец, не увенчались успехом. Это может говорить о том, что высокий уровень экспрессии генов глиоксилатного цикла привёл бы к губительным последствиям для клетки. Определённую пользу для внедрения глиоксилатного цикла в клетки млекопитающих, возможно, принесло бы терапевтическое клонирование , которые дало бы исследователям возможность проверить функциональную интеграцию генов цикла в геноме до внедрения непосредственно в организм .

Примечания

  1. Нетрусов А. И., Котова И. Б. Микробиология. — 4-е изд., перераб. и доп.. — М. : Издательский центр «Академия», 2012. — С. 128. — 384 с. — ISBN 978-5-7695-7979-0 .
  2. Kondrashov F. A. , Koonin E. V. , Morgunov I. G. , Finogenova T. V. , Kondrashova M. N. (англ.) // Biology direct. — 2006. — Vol. 1. — P. 31. — doi : . — . [ ]
  3. Lorenz M. C. , Fink G. R. (англ.) // Eukaryotic cell. — 2002. — Vol. 1, no. 5 . — P. 657—662. — . [ ]
  4. Popov E. A., Moskalev E. A., Shevchenko M. U., Eprintsev A. T. Comparative analysis of glyoxylate cycle key enzyme isocitrate lyase from organisms of different systematic groups // Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology. — 2005. — Vol. 41, № 6 . — P. 631–639. — doi : .
  5. Bryan A. Wilson, Jonathan C. Schisler, Monte S. Willis. // LabMedicine. — 2010. — Т. 41 . — С. 377—380 . — doi : . (недоступная ссылка)
  6. , p. 638.
  7. , с. 315.
  8. Lorenz M. C. , Fink G. R. (англ.) // Nature. — 2001. — Vol. 412, no. 6842 . — P. 83—86. — doi : . — . [ ]
  9. Kunze M. , Pracharoenwattana I. , Smith S. M. , Hartig A. (англ.) // Biochimica et biophysica acta. — 2006. — Vol. 1763, no. 12 . — P. 1441—1452. — doi : . — . [ ]
  10. — статья из Биологического энциклопедического словаря
  11. Davis W. L. , Goodman D. B. (англ.) // The Anatomical record. — 1992. — Vol. 234, no. 4 . — P. 461—468. — doi : . — . [ ]
  12. Davis W. L. , Jones R. G. , Farmer G. R. , Dickerson T. , Cortinas E. , Cooper O. J. , Crawford L. , Goodman D. B. (англ.) // The Anatomical record. — 1990. — Vol. 227, no. 3 . — P. 271—284. — doi : . — . [ ]
  13. Storrey, Kenneth. (англ.) . — Hobocken, New Jersey: John Wiley and Sons, Inc., 2004. — P. —223. — ISBN 0-471-41090-X .
  14. Davis W. L. , Goodman D. B. , Crawford L. A. , Cooper O. J. , Matthews J. L. (англ.) // Biochimica et biophysica acta. — 1990. — Vol. 1051, no. 3 . — P. 276—278. — . [ ]
  15. Jones J. D. , Burnett P. , Zollman P. (англ.) // Comparative biochemistry and physiology. Part B, Biochemistry & molecular biology. — 1999. — Vol. 124, no. 2 . — P. 177—179. — . [ ]
  16. Davis W. L. , Jones R. G. , Farmer G. R. , Cortinas E. , Matthews J. L. , Goodman D. B. (англ.) // Bone. — 1989. — Vol. 10, no. 3 . — P. 201—206. — . [ ]
  17. , p. 639.
  18. Ward K. A. (англ.) // Trends in biotechnology. — 2000. — Vol. 18, no. 3 . — P. 99—102. — . [ ]
  19. Ward K. A. , Nancarrow C. D. (англ.) // Experientia. — 1991. — Vol. 47, no. 9 . — P. 913—922. — . [ ]

Литература

  • Хелдт Г.—В. Биохимия растений. — М. : Бином. Лаборатория знаний, 2011. — 463 с. — ISBN 978-5-94774-795-5 .
  • David L. Nelson, Michael M. Cox. . — Fifth edition. — New York: W. H. Freeman and company, 2008. — 1158 p. — ISBN 978-0-7167-7108-1 .
Источник —

Same as Глиоксилатный цикл