Криопроте́кторы — вещества , защищающие живые объекты от повреждающего действия замораживания. Криопротекторы используют при криоконсервации — низкотемпературном хранении живых объектов (другими словами, при замораживании клеточных культур , крови, спермы , эмбрионов, изолированных органов и биологических объектов целиком ).

Витрификация имеет важное применение для сохранения эмбрионов, биологических тканей и органов для трансплантации . Стеклование также используется в крионике. для устранения повреждений от замерзания. Криозащитные свойства этих веществ заключаются в понижении температуры стеклования замороженного объекта ниже точки плавления. Таким образом, криопротекторы предотвращают эффективное замерзание, и система сохраняет некоторую гибкость в стеклообразной фазе, таким образом, ведя себя как аморфное твердое тело , которое затвердевает без образования кристаллов, что может повредить образец

В случае биологических образцов повреждение в основном вызвано не кристаллами льда (поскольку внутренняя часть клеток обычно не замерзает таким образом, если вообще не замерзает), а изменениями осмотического давления и ионной силы (содержание электролита в жидкости ячейки). При замораживании на живые объекты воздействуют два повреждающих фактора: формирование внутриклеточного льда и обезвоживание . Помещение живых объектов в растворы криопротекторов и замораживание в этих растворах снижает или исключает полностью формирование внутриклеточного льда и обезвоживание.

Многие криопротекторы также функционируют, образуя водородные связи с биологическими молекулами при замене молекул воды. Водородная связь в водных растворах важна для правильного функционирования белков и ДНК. Следовательно, когда криопротектор заменяет молекулы воды, биологический материал сохраняет свою естественную физиологическую структуру (и функцию), хотя он больше не погружаeтся в водную среду. Такая стратегия сохранения очень часто наблюдается при . Замена обычной воды на тяжёлую усиливает действие криопротекторов, благодаря образованию более прочных водородных связей.

Классификация

Существует большое количество веществ, обладающих криопротекторными свойствами, но в медицинской и лабораторной практике используют не более десятка соединений, которые будут перечислены ниже. Различают криопротекторы двух типов: проникающие и непроникающие.

• К проникающим относят криопротекторы, проникающие внутрь клетки. Проникающие криопротекторы препятствуют формированию кристаллов льда за счёт образования водородных связей с молекулами воды. Наиболее распространенные проникающие криопротекторы: глицерин , пропиленгликоль , этиленгликоль , диметилсульфоксид .
• К непроникающим относят криопротекторы, не проникающие внутрь клеток. Принцип действия непроникающих криопротекторов до конца не ясен. Вероятно, оно двояко: снижение скорости роста кристаллов и защита клетки от осмотических перепадов. К непроникающим криопротекторам относят две группы веществ: олигосахариды (наиболее часто используют сахарозу и трегалозу ) и высокомолекулярные соединения (наиболее часто используют , альбумин , поливинилпирролидон ). Использование непроникающих криопротекторов в отсутствие проникающих неэффективно, то есть непроникающие криопротекторы являются дополнительными компонентами в растворах проникающих криопротекторов.

Криопротекторы работают, увеличивая концентрацию растворенных веществ в клетках. Однако для того, чтобы быть биологически совместимыми, они должны (1) легко проникать в клетки и (2) не быть токсичными для самих клеток. После размораживания живые объекты необходимо освободить от криопротекторов.

Биологические антифризы

Биологические антифризы включают низкомолекулярные соединения и антифризы. Они встречаются, в частности, у организмов арктического климата. Глицерин , другие полиолы , мочевина и глюкоза , среди прочего, используются в качестве низкомолекулярных соединений. Это соединения, которые легко образуют водородные связи с соседними молекулами воды. Cоединения проникая в клеточные мембраны , препятствуют росту кристаллов льда. Это снижает температуру замерзания внутри клеток. В некоторых случаях концентрация воды в клетках также снижается ( ).

Большинство белков-антифризов не препятствуют замерзанию плазмы клеток, но могут немного задержать его. Их действие основано на том факте, что они препятствуют росту кристаллов льда и защищают уже образовавшиеся кристаллы льда, которые могут действовать как зародыши кристаллизации . В результате получаемые кристаллы остаются мелкими, лед становится мелкозернистым и не может разрушить структуры клетки, даже если промерзнет. После оттаивания клетка возобновляет свои нормальные функции.

Белки-антифризы

Белки-антифризы(AFP), относятся к классу полипептидов, продуцируемых некоторыми позвоночными, растениями, грибами и бактериями, которые позволяют им выживать в отрицательных средах. Эти белки связываются с маленькими кристаллами льда и препятствуют их росту и перекристаллизации, что в противном случае было бы фатальным. Также появляется все больше доказательств того, что AFP взаимодействуют с клеточными мембранами клеток млекопитающих, чтобы защитить их от повреждения холодом.

Белки-антифризы не понижают температуру замерзания пропорционально концентрации. Скорее, они работают неколлигативно . Это позволяет им действовать как антифриз в концентрациях от 1/300 до 1/500 по сравнению с другими растворенными веществами, с последующей минимизацией их влияния на осмотическое давление . Эти необычные способности объясняются их способностью связываться с определенными поверхностями кристаллов льда.

Белки-антифризы создают разницу между точкой плавления льда и точкой замерзания воды, известной как тепловой гистерезис . Добавление белков AFP на границе раздела между льдом и жидкой водой подавляет термодинамически благоприятный рост кристаллов льда . Рост кристаллов кинетически тормозится AFP, которые покрывают поверхности кристаллов льда, доступные для воды.

B промышленности

Наиболее распространенными криопротекторами в промышленности являются различные гликоли , то есть полигидроксоспирты ( этиленгликоль , пропиленгликоль , глицерин ). Этиленгликоль входит в состав жидкостей для зимних автомобильных радиаторов, а пропиленгликоль иногда используется для уменьшения количества кристаллов льда в мороженом и получения более гладкой массы. Другой популярный криопротектор - диметилсульфоксид вместе с глицерином, обычно используемый для защиты биологических образцов (спермы, эмбрионы) во время их хранения в жидком азоте.

Для повышения эффективности криопротекторов и смягчения побочных эффектов от их применения чаще всего используются их смеси. Смесь формамида с диметилсульфоксидом, пропиленгликолем и соответствующим коллоидом долгое время была наиболее эффективным искусственно созданным криопротектором.

Криопротекторы и эмбриология

Витрификация широко используется в качестве метода криоконсервации эмбрионов и ооцитов . Указанное стеклование достигается за счет очень быстрого охлаждения, при котором используется высококонцентрированный раствор, который не кристаллизуется при замораживании, так что его вязкость увеличивается с понижением температуры до образования аморфного твердого состояния. Скорость снижения температуры достигает 23000 ° С / мин. Чтобы добиться большого изменения температуры на высокой скорости, используется минимальный объем среды (менее 0,1 микролитра) и жидкий азот при -196 ° C. Скорость воздействия и замораживания должна быть достаточно высокой, чтобы избежать токсичности и образования внутриклеточных кристаллов, которые могут повредить содержимое клетки. Чтобы добиться очень быстрого обезвоживания, используются криопротекторы в высоких концентрациях. Скорость замораживания / оттаивания косвенно пропорциональна концентрации криопротекторов. Перед замораживанием биологический материал должен быть уравновешен этим криозащитным раствором (в более низкой концентрации), чтобы он мог выдержать осмотический шок. Выживаемость образцов превышает 90%, и эмбрионы обычно выживают в целости и сохранности.

После точной настройки витрификации в лаборатории выживаемость превышает 90%, независимо от типа образца. Эмбрионы обычно выживают неповрежденными (100% бластомеров). Этот метод полезен как для эмбрионов, так и для ооцитов, но не для сперматозоидов. Чрезвычайная скорость требуется в процессе расстекловывания (оттаивания), удаления пробы из жидкого азота и введения ее в середину при 37 ° C. Некоторые исследования подчеркивают, что эта скорость оттаивания может быть более важной, чем скорость замораживания, для достижения высокой выживаемости криоконсервированных ооцитов.

См. также

• Аморфный лёд
• Анабиоз

Примечания

Литература

• Best B P Cryoprotectant Toxicity: Facts, Issues, and Questions. Rejuvenation Res. 2015 Oct;18(5):422-36. doi: 10.1089/rej.2014.1656. Epub 2015 Sep 22.
• Белоус А. М., Грищенко В. И. / Криобиология. — Киев, «Наукова думка», 1994, — 432 с.
• Урмацких А.В. "Способ криоконсервации клеток, органов, тканей и организмов". RU 2804972 C2, 05.04.2022.