Interested Article - Южная амбарная огнёвка

Южная амбарная огнёвка , или индийская моль , или южная огнёвка , или амбарная огнёвка ( лат. Plodia interpunctella ) — вид чешуекрылых из семейства настоящих огнёвок (Pyralidae). Единственный представитель рода Plodia . Бабочки имеют размах крыльев 16—20 мм и хорошо отличаются от других близких видов огнёвок прямыми губными щупиками и двуцветной окраской крыльев — беловато-жёлтой или серо-жёлтой в основании и ржаво-охристой или красно-коричневой в вершинных 2/3 передних крыльев. Опасный вредитель запасов пищевых продуктов. Изредка встречается в гнёздах птиц . Гусеницы могут паразитировать в полостях тела и под кожей позвоночных. Эта огнёвка может провоцировать развитие анафилактической аллергии . Симбиотические бактерии, живущие в кишечнике гусениц, способны разрушать полиэтиленовую и поливинилхлоридную плёнку, и обеспечивают иммунитет к патогенным микроорганизмам. На стадии имаго не питается. Общая плодовитость составляет до 400 яиц. Развитие в зависимости от экологических условий происходит с диапаузой или без неё. При оптимальных условиях в течение года может быть 18 поколений. В кариотипе Plodia interpunctella 30 пар хромосом . В W-хромосоме обнаружен большой специфичный для самок участок гетерохроматина (PiSAT1). Митохондриальный геном состоит 15287 пар нуклеотидов , в которых закодирована последовательность 36 генов. Космополитный и синантропный вид.

Описание

Имаго

Размах крыльев 13—20 мм . Длина переднего крыла самцов 5,65—5,92 мм, самок — 6,40—6,82 мм . Длина тела 6—8,5 мм . Самки в среднем крупнее самцов . Губные щупики направлены вперёд и немного опущены, с прижатыми чешуйками, а конечный их членик короткий и заострён . Челюстные щупики укорочены, нитевидные. Губные щупальца 3-членистые, сильно выдаются вперёд, наподобие клюва. Голова довольно сильно сплющена сверху вниз, покрыта красновато-оранжевыми чешуйками, которые выступают над лбом в виде конуса. Лоб конусовидный. Глаза чёрные, обрамлены тонкими, довольно длинными щетинками. Простые глазки располагаются у границы между лобной поверхностью и теменем (за основанием усиков). Ротовые органы расположены в нижней части головы. У самцов усики покрыты короткими ресничками, у самок — нитевидные. Грудь и тело красновато-оранжевого цвета. Тегулы (небольшие пластинки, которые прикрывает сверху место прикрепления крыльев к груди) густо покрыты чешуйками. Крылья имеют по краям 3 ряда длинных волосовидных чешуек, которые образуют короткую бахромку. Передние крылья узкие, отношение длины и ширины 1:3,5, с изогнутым передним краем, округло-треугольные, с неразделённой срединной ячейкой. Окраска передних крыльев двухцветная — беловато-жёлтая или серо-жёлтая в области их основания и бурая, ржаво-охряная или красно-коричневая в остальной части. Рисунок на передних крыльях состоит из двух проходящих поперёк крыла тёмно-бурых перевязей со свинцово-бурым блеском и тёмного пятна (в середине радиально-кубитальной ячейки крыла) на конце скрученной ячейки. Задние крылья коротко-овальные, однотонные, грязно-белые или серовато-белые, с затемнённым наружным краем и коричневой каймой. Субкостальная жилка впадает в костальный край переднего крыла за его серединой. Передние крылья без жилок R 3 , R 5 и M 2 , на задних отсутствует только M 2 . Жилка A 2 на передних крыльях не ветвится. На задних крыльях субкостальная жилка на значительном протяжении слита со стволом радиальных жилок. У самцов нижняя сторона передних крыльев имеет заворот, снизу окружённый волосковидными чешуйками . Ноги хорошо развиты. Бедро и голень передних ног короткие. В строении генитального аппарата самца вальвы узкие с загнутым внутрь верхним краем. Перед их вершинами располагается небольшого размера вырост в форме зубца. Наружный край вальвы несёт на себе слабовыраженные зазубрины. Пенис имеет вид простой слабо склерозированной трубки с расширенным основанием, по длине равной вальве. Саккус (отросток, простирающийся внутрь брюшка) широкий, желобовидный. В строении генитального аппарата самки лопасти вагинальной пластинки не соединены между собой. Совокупительная сумка с коротким протоком, конец которого расширен и сильно пигментирован. Её стенки покрыты концентрически расположенными рядами из мелких шипиков .

Яйцо

Яйца беловато-желтоватого цвета и овальной формы. Их размеры составляют 0,4—0,62×0,23—0,28 мм. Оболочка слабо ячеистая. В конце развития яйца становятся мутно-белого цвета, сквозь оболочку просвечивается сформировавшаяся гусеница .

Гусеница

На момент вылупления из яйца гусеницы имеют длину 0,7—1 мм, на последней стадии развития достигают длины 10—16 мм. Тело мягкое, червеобразное, его форма приближена к цилиндрической, суживается к обоим концам. Кожа гладкая, поверхность кутикулы покрыта мелкими, густыми микроскопическими бугорками с плоской вершиной. Окраска тела взрослой гусеницы беловато-жёлтая или зеленоватая. Нижний край головы по середине тёмно-коричневый или чёрный. Лоб занимает 2/3 высоты головы. По бокам головы имеется по шесть, реже пять, простых глазков , при этом 3 и 4 глазки иногда соприкасаются. С каждой стороны у основания головы имеются по одному продолговатому пятну. Верхние челюсти на вершине с тремя зубцами. Самым крупным из них является средний зубец. Дыхальца располагаются на переднегруди и на восьми сегментах брюшка. Самыми крупными является дыхальца восьмого сегмента . Они отчётливо выступают над поверхностью тела и их край со слабо склеротизированной каймой . Тёмные пятна у основания щетинок, в отличие от гусениц огнёвок рода , отсутствуют . Тазики передних ног расставлены на 2/3 своего диаметра, а промежуток между средне- и заднегрудными тазиками примерно равен ему. Брюшко с четырьмя парами ног. Крючки на этих ногах расположены венцом в два круга. Большие крючки в три раза больше мелких .

Куколка

Куколка длиной 6,2—9 мм . Форма куколки веретеновидная, голова округлая, покровы хитинизированные и плотные. Её окраска изменяется в процессе развития. Первоначально она жёлтая, затем — у неё темнеют глаза, а перед выходом бабочки темнеет вся куколка. Теменной шов на голове хорошо развит. Грудные дыхальца хорошо заметные, округлой формы. Поверхность куколки гладкая. Шипы и волоски на теле отсутствуют . Брюшко гладкое, без ямчатой скульптуры. Между IX и Х сегментами брюшка отсутствует борозда на дорсальной (спинной) стороне куколки .

Биология

Спаривание

Встречаются преимущественно в отапливаемых жилых помещениях, на складах, предприятиях пищевой промышленности, в хранилищах, подсобных помещениях и торговых залах продуктовых магазинов, на мукомольных предприятиях, хлебокомбинатах, пивных заводах, кондитерских фабриках, в пекарнях и т. п. Также обнаружены в гнёздах птиц , шмелей , пчёл-листорезов , пчёл антофор ( Anthophora ), бумажных ос ( Polistes ) и пчёл осмий ( Osmia ) .

Бабочки выходят из куколок обычно во второй половине дня или под вечер. Сразу после выхода бабочки обычно сидят около своего кокона или отползают в сторону, взбираются на возвышение, выступы стен и замирают в положении с висящим вниз брюшком до расправления крыльев. Расправление и высыхание крыльев длится обычно 30-40 минут. Расправленные крылья отвердевают и приобретают окончательную окраску. После этого бабочки прячутся или улетают . Лёт бабочек растянут. Они ведут ночной или сумеречный образ жизни, когда в спектре преобладает синий свет (400—475 нм) . В дневное время и во время отдыха они обычно мало подвижны, сидят на стенах, на нижней стороне различных предметов, реже на их боковых сторонах и крайне редко сверху . Летают вечером и в ночное время и обычно не летят на искусственные источники света . Самцы и спарившиеся самки иногда совершают дальние перелёты, это также происходит обычно в сумерках. Самцы более активные и подвижные, чем самки. Бабочки не питаются ( афагия ) и живут за счёт запасов питательных веществ, накопленных на стадии гусеницы. Продолжительность жизни бабочек обоих полов зависит от температуры окружающей среды, а также их участия в процессе спаривании. Она составляет 5-20 дней при спаривании и больше, если бабочки не спаривались. Самки живут меньше самцов .

Размножение

Появившиеся весной из перезимовавших куколок бабочки обычно спариваются уже в день своего выхода из куколки, по другим источникам — через несколько дней после выхода из куколки . Оптимальными являются температуры от 20 до 30°С. В опытах в температурном интервале между 30 и 35°С активность спаривания увеличивалась при возрастании относительной влажности. При других температурах влияние влажности было менее заметно или не проявлялось. Спаривания при температурах ниже 20°С было более продолжительным, чем при температуре более. При высоких температурах увеличение относительной влажности воздуха приводило к увеличению продолжительности спаривания . Самки могут спариваться несколько раз с разными самцами , а самцы — с несколькими самками .

Как самки, так и самцы выделяют феромоны , которые влияют на половое поведение при поиске партнёра и спаривании . У Plodia interpunctella идентифицировано четыре первичных феромона самок: (Z,E)-9,12-тетрадекадиенилацетат, (Z,E)-9,12-тетрадекадиеналь, (Z,E)-9,12-тетрадекадиенол и (Z)-9-тетрадеценилацетат. Удаление любого компонента смеси снижает число привлечённых самцов . Было высказано предположение, что причина наличия такого большого количества компонентов в феромоне заключается в том, что он обеспечивает видовую специфичность . Самцы также выделяют феромоны. Приблизившись к самке, самец выделяет феромоны из андроконий , расположенных у основания каждого переднего крыла. Эти феромоны заставляют самку оставаться неподвижной в позе с приподнятым брюшком между крыльями, что облегчает спаривание .

Самцы прилетают к самкам. Спаривающиеся бабочки обычно сидят на стенах помещений, обращены головами в противоположные стороны. Самки спариваются с несколькими самцами. Последние имеют ограниченное количество сперматозоидов и в зависимости от различных факторов выделяют разное их количество во время спаривания. Самцы передают большее количество половых клеток самкам, которые ранее уже спаривались несколько раз, чтобы повысить свои шансы на успех в конкуренции сперматозоидов других самцов. Самцы также выделяют больше сперматозоидов при спаривании с более «молодой» самкой .

Созревание яиц в теле самки после спаривания с самцом происходит за два — четыре приёма. В первый раз созревает наибольшее количество яиц, которое и откладывается самкой через 1-2 суток после спаривания . По другой информации самка приступает к откладыванию яиц уже спустя несколько часов после спаривания . При откладке яиц самка стремится распределить их как можно шире по всей поверхности питательного субстрата для гусениц. Отложив первую порцию яиц, самка успокаивается до следующего дня, когда приступает к откладыванию новой кладки. Яйца откладываются одиночно или группами до 30 штук , иногда размер кладки достигает 275 яиц . Общая плодовитость одной самки составляет от 150 до 400 яиц . На неё влияют особенности потребляемой бабочками пищи, наличие воды, а также размеры и физиологическое состояние самки. Биоритмы , вероятно, оказывают слабое воздействие на откладку яиц . Продолжительность эмбрионального развития (стадия яйца) составляет от 2 до 16 дней : от 3—4 (при 30 °С) до 7—8 суток (при 20 °С). При температуре 15°С и ниже яйца не вылупляются . В среднем стадия яйца при благоприятных условиях составляет 4—5 дней .

Питание и развитие гусениц

Семечки подсолнечника , повреждённые гусеницами южной амбарной огнёвки

За время своего развития гусеницы проходят пять-семь возрастов . Выйдя из яйца, гусеницы начинают активно и быстро ползать в поисках подходящего для себя места, например, трещин либо морщинок кожицы плода или зерна, и забираются внутрь них . На 2—3-й день жизни гусеницы сооружают из выделяемой ими шелковистой нити паутинную трубочку и прикрепляет к ней свои экскременты. Находясь в трубочке, гусеницы питаются, прогрызая вокруг себя широкий ход в пищевом субстрате . Они могут покидать свои паутинные трубочки, а при питании в таких пищевых субстратах, как сухофрукты, часто не сооружают их вовсе, а живут внутри сухих плодов. Потревоженные гусеницы сворачиваются кольцом .

Гусеницы могут питаться очень широким спектром сухих пищевых продуктов, главным образом, растительного происхождения: мукой, различными крупами, зерном, пшеницей, рожью, кукурузой, рисом и продуктами их переработки, зерновыми хлопьями, макаронными изделиями, сухими хлебобулочными изделиями, сушёными фруктами и овощами, изюмом, различными орехами, каштанами, желудями, семенами бобовых , включая фасоль и горох , различными семенами, арахисом, лекарственным сырьём, сушёными травами, пряностями , шоколадом и изделиями из него, сухими дрожжами , солодом и другими растительными субстратами . Известны случаи питания гусениц сухими кормами для домашних животных (на растительной основе), птичьим кормом, сухими суповыми смесями, измельчённым красным перцем , какао-бобами , заменителями кофе, печеньем, старыми сотами и пергой пчёл и даже ядовитыми семенами дурмана ( Datura stramonium ) . Предпочитают в первую очередь муку, особенно кукурузную , хотя питание ею приводит к увеличению времени развития бабочек . В зёрнах гусеницы в первую очередь выедают зародыш, и чем суше семя, тем сильнее оно повреждается таким образом . Качество и характер пищевого субстрата оказывают большое влияние на процесс развития гусениц. От них же зависит скорость развития гусениц . Так, из гусениц, питавшихся мукой, выходят бабочки меньших размеров, чем из гусениц, питавшихся сухофруктами .

Гусеницы покрывают пищевой субстрат шелковиной (паутиной), при значительном развитии в нём образуются комки. Продолжительность развития 23—56 суток . Самки развиваются быстрее самцов . Оптимальные температуры развития гусениц лежат в диапазоне от 18 до 35 °С. Порог устойчивости — 10°С .

В кишечнике Plodia interpunctella идентифицированы несколько видов симбиотических микроорганизмов ( YT1 и Bacillus spp. YP1), позволяющие им осуществлять биодеградацию полиэтилена и других пластмасс . Видовой состав и численность микроорганизмов кишечника зависит от состава корма. Помимо участия в пищеварении они могут защищать хозяина от патогенных микроорганизмов, формирую стойкий иммунитет к ним .

Характерной поведенческой особенностью гусениц южной мучной огнёвки является каннибализм . Он является одним из механизмов конкуренции, оказывает влияние на динамику популяции вида. Обычно гусеницы пятого и четвёртого возраста преимущественно поедают здоровых гусениц более ранних возрастов, а также заражённых вирусами гусениц равных с ними размеров. Заражённые гусеницы менее активны и не травмируют гусеницу-каннибала при нападении. Это характерно для гусениц третьего возраста, которые преимущественно нападают на инфицированных особей второго возраста .

Переход в состояние диапаузы происходит после пятого возраста и контролируется продолжительностью фотопериода и температурой, её интенсивность различается у разных линий . Непосредственным пусковым сигналом к диапаузе может быть резкое снижение температуры и продолжительность освещения меньше 13 часов . Диапауза, вызванная температурой около 20 °С, имеет продолжительность не более 4 месяцев, а при температуре выше 25 °С она может удлинятся до 9 месяцев . Максимальная зарегистрированная продолжительность развития 267 суток. Скорость развития гусениц из одной кладки в одинаковых условиях различается. Размер бабочек зависит от особенностей корма. Особи, питавшиеся сухофруктами на стадии гусеницы на стадии имаго, как правило, крупнее выросших на муке . Развитие может происходить и без диапаузы.

Последний возраст гусеницы отличается большой продолжительностью . В его начале гусеницы активно двигаются и питаются, а спустя 5-7 дней при благоприятных условиях перестают питаться , покидают кормовой субстрат и перемещаются от 12 до 48 часов в поисках подходящего места для образования кокона . Окукливаются в полупрозрачном коконе цилиндрической формы. Наиболее часто окукливаются в щелях и трещинах в стенах и полу, открыто на стенах, в складках мешков с кормовым субстратом, иногда — в кормовом субстрате, которым питалась гусеница .

Куколка развивается от 7 до 31 суток . Продолжительность её развития зависит от температуры окружающей среды. Количество поколений, способных развиться за год находится в зависимости от продолжительности времени, на протяжении которого сохраняются условия, необходимые для развития гусениц. При оптимальных условиях в течение года максимально может развиваться до 18 поколений . Наблюдается устойчивая зависимость количества поколений от климатических факторов места обитания, в первую очередь от температурных показателей. На севере ареала только одно поколение . Зимуют гусеницы последнего возраста в коконах, реже — куколки .

Естественные враги

Bracon hebetor — паразит южной амбарной огнёвки

Гусеницы южной амбарной огнёвки являются хозяевами паразитических клещей перепончатокрылых и двукрылых . Среди таких паразитов отмечены ихневмониды ( , , , , = Diadegma kiehtani ), бракониды ( Bracon hebetor , , ), птеромалиды ( ), муравьи ( Iridomyrmex purpureus , ), тахины ( , ). Хищниками южной амбарной огнёвки являются клопы семейства ( ), клещи семейства ( ) .

Паразитами гусениц Plodia interpunctella являются нематоды родов и . Эти паразиты проникают в тело хозяина через рот, дыхальца или анальное отверстие и развиваются на протяжении двух-трёх поколений. Непосредственной причиной смерти являются выделения бактерий- мутуалистов spp., которые были обнаружены в кишечнике нематод. Смерть гусениц происходит в течение 48 часов . В лабораторных условиях смертность от нематод может составлять от 62,25 % до 71,25 % .

Южная амбарная огнёвка восприимчива к вирусу гранулёза, который относится к семейству бакуловирусов . Заражаются гусеницы на ранних стадиях развития, а личинки последнего возраста либо устойчивы к вирусу или могут содержать сублетальные концентрации патогена . Передача вируса гранулёза может происходить как горизонтально (от особи к особи), так и вертикально (от родителей к потомкам). Было показано, что и самки и самцы способны передавать сублетальную инфекцию своему потомству . Одним из способов передачи вируса в популяции является каннибализм . Отмечено также поражение микроспоридиями рода и бактериями Bacillus thuringiensis .

Генетика

В кариотипе Plodia interpunctella 30 пар хромосом. Самцы имеют две одинаковые (ZZ) половые хромосомы, а самки гетерогаметны (ZW) . В W-хромосоме обнаружен крупный (более трети длины) участок гетерохроматина (PiSAT1), представляющий собой специфичную для самок последовательность нуклеотидов. У многих других видов чешуекрылых W-хромосома состоит из чередующихся специфических для самок и общих для обоих полов последовательностей. Выявлено, что этот уникальный для Plodia interpunctella участок является сателлитной ДНК и редко встречается в аутосомах и/или Z-хромосоме. Предполагают, что он может выполнять регуляторную роль через образование некодирующей РНК .

Митохондриальный геном состоит из 15287 пар нуклеотидов, в которых закодирована последовательность 36 генов и контрольной области. В 13 генах зашифрована информация белках, 2 гена производят рибосомальную РНК , 22 гена используются для синтеза транспортной РНК . В нуклеотидом составе 80,15 % составляют нуклеотиды A и Т . Белок-кодирующие гены начинаются обычно с последовательности ATA, ATC, ATG и ATT и только ген первой субъединицы цитохром-c-оксидазы ( cox1 ) может начинаться с кодона CGA. У четырёх белковых генов терминирующий кодоны неполные T или TA. Из генов транспортной РНК только trnS1 (AGN) не образует типичной структуры клеверного листа. Контрольная область состоит из 327 пар нуклеотидов .

Классификация и распространение

Вид описан Якобом Хюбнером в 1813 году как Tinea interpunctella , является единственным представителем рода Plodia Guenée , 1845 . Близкородственными родами являются и .

Вид является космополитом . Современный ареал охватывает преимущественно тропические и субтропические регионы всех континентов . В мире широко распространён в странах Средиземноморья , Западной и Восточной Европы , на Кавказе, в Закавказье, странах Средней и Малой Азии , Северной Африке , Северной Америки , Южной Америки , Австралии . На севере ареала встречается только в помещениях . Распространена южная амбарная огнёвка в том числе в южной части России и стран СНГ , встречаясь также в помещениях среднеширотных и северных регионов . В летние месяцы на юге европейской части России и на Кавказе может летом давать и 1-2 поколения в природе. Южная амбарная огнёвка обычна в складах, подсобных помещениях продуктовых магазинов, на мукомольных предприятиях и т. п.

Существуют две основные гипотезы происхождения и расселения южной амбарной огнёвки. Одни учёные считают родиной вида Средиземноморье , другие предполагают, что он происходит из Северной Америки . В СССР завезена в 1920-х годах. Предполагают, что в Европу этот вид попал из Индии , поэтому его также называют индийской молью . По другой версии, название индийская моль было впервые предложено американским энтомологом в 1858 году, потому что он наблюдал, как личинки питаются кукурузной мукой , которую в то время называли индийской мукой .

Карантинный объект для Венгрии , Чехии , Словакии , Монголии , Китая .

Хозяйственное значение

Бабочки Plodia interpunctella на зерне

Гусеницы южной амбарной огнёвки являются вредителями самых разнообразных продовольственных запасов в хранилищах, магазинах, пищевых предприятиях и жилых домах. Зарегистрированы в качестве вредителей как минимум 179 различных видов пищевых запасов , включая муку, особенно кукурузную, зерно, рожь, пшеницу, кукурузу, рис и продукты их переработки, сушёные фрукты и овощи, пряности, изюм , шоколад и изделия из него, различные орехи, арахис, лекарственное сырьё, сушёные травы, сушёный табак и табачные изделия , сухие дрожжи . Также могут повреждать гербарные образцы, энтомологические коллекции . Распространяются с заражёнными продуктами, а в пределах населённого пункта или предприятия также путём разлёта бабочек .

Гусеницами чаще всего повреждается верхний слой пищевого субстрата на глубину до 20 см. Повреждённые продукты оплетаются паутиной и засоряются экскрементами. Паутина , выделяемая гусеницами, смешивается с экскрементами и личиночными шкурками , что придаёт заражённым продуктам неприятный запах. При интенсивном поражении паутинный слой может быть очень толстый . В некоторых районах вредоносность южной амбарной огнёвки может быть выше, чем у мучной огнёвки ( Pyralis farinalis ) .

Южная амбарная огнёвка также является одним из опасных вредителей в шмелеводстве . Бабочки могут проникать внутрь гнёзд шмелей , например земляного шмеля ( Bombus terrestris ), и откладывают там яйца . Гусеницы поедают, а также загрязняют своими экскрементами кормовые запасы в гнёздах, а также повреждают расплод шмелей .

Известны случаи паразитирования гусениц в полостях тела некоторых домашних животных. Так живые гусеницы были извлечены из полости головного мозга индийского кольчатого попугая и из подкожной клетчатки домашних кошек .

Гусеницы четвёртого и пятого возраста могут проделывать входные отверстия в полиэтиленовых пакетах толщиной 0,03 мм. Для поиска входных отверстий молодые гусеницы могут преодолевать расстояние до 38 см . Они способны прогрызать также плёнки из поливинилхлорида в течение пяти дней , а через многослойную полипропиленовую плёнку они проникают на 21 сутки экспозиции .

Непосредственный контакт с гусеницами и бабочками, вдыхание фрагментов их тел или продуктов их жизнедеятельности может вызывать у человека различные бронхолёгочные заболевания . Попадание гусениц и их экскрементов вместе с заражёнными ими пищевыми субстратами в пищеварительную систему человека может привести к развитию желудочно-кишечных расстройств. Пищеварительные ферменты гусениц являются аллергенами, которые могут провоцировать развитие аллергических реакций — ринитов, конъюнктивитов, а при попадании на кожные покровы вызывать различные дерматиты . Около половины (51 %) пациентов, страдающих аллергией на домашнюю пыль, имели иммуноположительную реакцию на экстракт этого вида чешуекрылых . Идентифицированными аллергенами являются и тиоредоксин . Белок аргининкиназа является перекрёстно-реагирующим аллергеном. При этом известно, что перекрестные свойства аллергенов могут влиять на клинические проявления возникающих аллергических реакций и на результаты проводимых диагностических проб . Развитие данных аллергические реакций может быть как самостоятельным, так и выступить в качестве этиологического фактора при возникновении бронхиальной астмы , аллергодерматозов, ангионевротических отёков и других заболеваний . Доказано существование чётких связей между плотностью южной амбарной огнёвки и развитием сенсибилизации у больных бронхиальной астмой . Развитие вышеуказанных заболеваний отмечается главным образом у людей, работающих в заражённых огнёвкой складских помещениях и приобретающих товары, поражённые её гусеницами .

Южная амбарная огнёвка используется наряду с другими видами насекомых в качестве белкового корма при разведении беспозвоночных энтомофагов, например в биологических лабораториях при крупных тепличных комбинатах, а также при разведении муравьёв в муравьиных фермах ( формикариях ) .

Методы борьбы

Профилактические меры борьбы с южной амбарной огнёвкой включают подготовку хранилищ и помещений перед приемкой и размещением на хранение сухого растительного сырья, проведение комплексного обследования всех объектов на зараженность, очистка и дезинсекция при помощи влажной или аэрозольной обработки; подготовка хранимого растительного сырья — сушка до сухого состояния или средней сухости, очистка от сорных примесей, снижение температуры хранения, опрыскивание контактными инсектицидами; проведение постоянного контроля за зараженностью насекомыми-вредителями. Также одним из важнейших условий предотвращения заражения сырья и продукции гусеницами южной амбарной огнёвки является содержание в чистоте складских и производственных помещений .

В качестве традиционного способа борьбы с огнёвкой использовалась фумигация бромистым метилом и фосфином . Производство бромистого метила, который является одним из озоноразрушающих веществ, было ограничено Монреальским протоколом с 1995 года . Были запрещены некоторые инсектициды на основе фосфорорганических соединений и уретанов . Появились устойчивые линии южной амбарной огнёвки к ряду веществ, например малатиону и хлорпирифосу . Устойчивость к фосфину была выявлена в 2016 году . Экологически безопасными фумигантами против южной амбарной огнёвки считаются метилбензоат и сульфурилфторид .

Это всё вынуждает находить альтернативные комплексные подходы к борьбе : прежде всего общесанитарные меры, такие как очистка трещин и щелей в стенах и самих стен от коконов, сортировка заражённого зерна, термическая обработка, хранение продуктов при пониженной концентрации кислорода в воздухе . Рекомендуется хранить продовольственные запасы при температуре ниже +15 °С . Понижение температуры до 10°С приводит к развитию стрессовых реакций, возрастает смертность, снижается плодовитость и жизнеспособность яиц .

Ловушка для южной амбарной моли

В лабораторных экспериментах показана возможность развития устойчивости к энтомопатогенной бактерии Bacillus thuringiensis , хотя нет прямых доказательств что такая устойчивость имеется у природных популяций .

Для контроля популяций Plodia interpunctella проводились лабораторные испытания с использованием аттрактантов , репеллентов , веществ стимулирующих и подавляющих спаривание. Широкого коммерческого применения в качестве мер борьбы эти методы не получили. Для оценки численности используют пищевые аттрактанты и феромонные ловушки . Применяются также клеевые ловушки, содержащие половые феромоны самок, которые способствуют удалению самцов из популяций, что помогает поддерживать численность вредителя на экономически безопасном уровне .

Осуществлялись лабораторные и полевые опыты применения естественных врагов, например яйцевых паразитов рода Trichogramma и нематод рода Heterorhabditis . Показана высокая эффективность Bracon hebetor .

Применяются также вирусы, вызывающие гранулёз . Было обнаружено, что в популяциях, подвергшихся воздействию вируса гранулёза, почти в два раза возрастает устойчивость к инфекции . Новой группой токсикантов , апробируемой для борьбы с южной амбарной огнёвкой, являются пропептиды , которые подавляют активность пищеварительных ферментов гусениц . Для контроля численности предложено также использовать стерилизованных самцов .

Альтернативой методов фумигации является обработка диатомитной пылью и спиносадом . При дозах 500 и 1000 ppm погибали до 86—97 % гусениц первого возраста. Природный инсектицид спиносад уже при дозе 1 ppm приводит к гибели до 97,6—99,6 % .

Для борьбы с гусеницами используется также обработка хранящихся продуктов гамма-излучением в дозах 250 Гр . При этом происходит разрушение клеток эпителия кишечника и снижение численности симбиотических бактерий .

Примечания

  1. Markku Savela. (англ.) . www.nic.funet.fi . Дата обращения: 13 января 2022. 15 января 2022 года.
  2. Загуляев А. К. Моли и огнёвки — вредители зерна и продовольственных запасов. — М. Л. : Издательство академии наук СССР, 1965. — С. 132—142. — 195 с.
  3. Насекомые и клещи — вредители сельскохозяйственных культур. Том III. Чешуекрылые. Ч. 2. — СПб.:: Издательство «Наука», 1999. — С. 153—154. — 410 с.
  4. Белошапкин С. П. и др. Словарь-справочник энтомолога. — М. : Нива России, 1992. — С. 186. — 334 с. — ISBN 5-260-00498-1 .
  5. Горностаев Г. Н. / под редакцией Г. А. Мазохина-Поршнякова . — М. : Мысль, 1970. — С. . — 372 с.
  6. Мигулин А. А., Осмоловский Г. Е., Литвинов Б. М., Покозий И. Т.. — Сельскохозяйственная энтомология. — Москва: Колос, 1976. — С. 425—429. — 448 с.
  7. Sait S. M., Begon M., Thompson D. J. (англ.) // Journal of Animal Ecology. — 1994. — Vol. 63 , iss. 4 . — P. 861–870. — ISSN . — doi : . 24 января 2022 года.
  8. Robinson W. H. Urban insects and arachnids: A handbook of urban entomology. — Cambridge: Cambridge University Press, 2005. — 480 с. — ISBN 0521812534 . — ISBN 978-0521812535 .
  9. Lewis Z., Wedell N., Hunt J. (англ.) // Evolution. — 2011. — Vol. 65 , iss. 7 . — P. 2085–2097 . — doi : . 14 января 2022 года.
  10. Kwon Y.J., Saeed S. & Duchateau M.J. Control of Plodia interpunctella (Lepidoptera: Pyralidae), a pest in Bombus terrestris (Hymenoptera: Apidae) colonies // The Canadian Entomologist. — 1998. — № 135 . — P. 893—902.
  11. Коновалова Т.В., Боярский А. И. Паразиты и вредители люцерновой пчелы-листореза Megachile rotundata F. // Бюллетень Всесоюзного Ордена Ленина Научно-исследовательского Института Экспериментальной Ветеринарии Им. Я.Р.Коваленко. — 1985. — С. 73—74 .
  12. Королько Р.Ю., Пономарёв В.А. Значение Plodia interpuntella и Calleria mellonella при использовании шмелей в защищённом грунте // Роль молодых учёных и исследователей в решении актуальных задач АПК. — Санкт-Петербург, 2019. — С. 15—17 .
  13. Cowan T., Gries G. (англ.) // Entomologia Experimentalis et Applicata. — 2009. — Vol. 131 , iss. 2 . — P. 148–158. — doi : . 13 января 2022 года.
  14. Grant G. G., Brady U. E. (англ.) // Canadian Journal of Zoology. — 1975. — Vol. 53. — Iss. 6 . — P. 813–826. — ISSN . — doi : .
  15. Mbata G. N. (англ.) // International Journal of Tropical Insect Science. — 1986. — Vol. 7. — Iss. 05 . — P. 623–628. — ISSN . — doi : .
  16. Cook P. A., Gage M. J. G. (англ.) // Behavioral Ecology and Sociobiology. — 1995. — Vol. 36 , iss. 4 . — P. 261–268. — ISSN . — doi : .
  17. Рязанова Г. И. // Зоологический журнал . — 2013. — Т. 92 , № 8 . — С. 921–926 .
  18. Zhu J., Ryne C., Unelius C. R., Valeur P. G., Lofstedt C. (англ.) // Entomologia Experimentalis et Applicata. — 1999. — Vol. 92 , iss. 2 . — P. 137–146 . — ISSN . — doi : .
  19. Cook Р. A., Gage M. J. G. (англ.) // Behavioral Ecology and Sociobiology. — 1995. — Vol. 36, no. 4 . — P. 261–268.
  20. Шорохов П.И., Шорохов С.И. Амбарные вредители и меры борьбы с ними. — Москва: Государственное издательство колхозной и совхозной литературы «Сельхозгиз», 1936. — 382 с.
  21. Mohandass S., Arthur F. H., Zhu K. Y., Throne J. E. (англ.) // Journal of stored products research. — 2007. — Vol. 43. — Iss. 3 . — P. 302–311. — doi : . 4 марта 2022 года.
  22. Мигулин А.А., Осмоловский Г.Е., Литвинов Б.М. и др. Сельскохозяйственная энтомология. — Москва: Колос, 1983. — 416 с.
  23. Бей-Биенко Г.Я., Богданов-Катьков Н.Н., Фалькенштейн Б Ю. и др. Сельскохозяйственная энтомология. Вредители сельскохозяйственных культур и меры борьбы с ними. — Второе, переработанное и дополненное издание.. — Москва-Ленинград: Огиз Сельхозгиз, 1949. — 764 с.
  24. Горяинов А.А. Амбарные вредители и борьба с ними. — Москва: издательство Новый агроном, 1924. — 120 с.
  25. Wang-Hee Lee, Jae-Min Jung, Junggon Kim, Hodan Lee, Sunghoon Jung. (англ.) // Journal of stored products research. — 2020. — Vol. 86. — P. 101577. — doi : . 25 июля 2022 года.
  26. Определитель насекомых европейской части СССР. Т. IV. Чешуекрылые. Третья часть // (Загуляев А. К. и др.) / под общ. ред. Г. С. Медведева . — Л. : Наука, 1986. — С. 334-335. — 504 с. — (Определители по фауне СССР, издаваемые Зоологическим институтом АН СССР ; вып. 144). — 2450 экз.
  27. Williams Gwyneth. The life-history of the Indian meal-moth, Plodia interpunctella (Hübner) (Lep. Phycitidae) in a warehouse in Britain and on different foods (англ.) // Annals of Applied Biology. — 1964. — Vol. 53, no. 3 . — P. 459–475.
  28. Grabe A. Eigenartige Geschmacksrichtungen bei Kleinschmetterlingsraupen (нем.) // Zeitschrift des Wiener Entomologen-Vereins. — 1942. — Nr. 27 . — P. 105–109.
  29. Kesti S. S., Shivasharana C. T. (англ.) // International journal of scientific research in biological sciences. — 2018. — Vol. 5, no. 6 . — P. 75—79. — ISSN . 13 января 2022 года.
  30. Mahmoud E. A., Al-Hagar O. E. A., Abd El-Aziz M. F. (англ.) // International Journal of Tropical Insect Science. — 2021. — Vol. 41. — Iss. 1 . — P. 261–272. — ISSN . — doi : .
  31. Boots M. (англ.) // Ecological Entomology. — 1998. — Vol. 23. — Iss. 2 . — P. 118–122. — doi : .
  32. Cotton B. T., Good N. E. . — Washington, D. C.: United states department of agriculture, 1938. — 83 с. — P. 35—48. 14 января 2022 года.
  33. Hagstrum D., Subramanyam B. . — Amsterdam: Elsevier, 2016. — 518 с. — P. 55. — ISBN 978-0-12-810456-9 . 14 января 2022 года.
  34. Mbata G. N., Shapiro-Ilan D. I. (англ.) // Environmental entomology. — 2005. — Vol. 34. — Iss. 3 . — P. 676–682. — ISSN . — doi : . 15 января 2022 года.
  35. Mbata G. N., Shapiro-Ilan D. I. (англ.) // Biological Control. — 2010. — Vol. 54. — Iss. 2 . — P. 75–82. — doi : . 15 июня 2022 года.
  36. Burden J. P., Griffiths C. M., Cory J. S., Smith P., Sait S. M. (англ.) // Molecular ecology. — 2002. — Iss. 3 . — P. 547–555. — ISSN . — doi : .
  37. Vítková M., Fuková I., Kubíčková S., Marec F. (англ.) // Chromosome Research. — 2007. — Vol. 15. — Iss. 7 . — P. 917–930. — ISSN . — doi : .
  38. Dalíková M., Zrzavá M., Kubíčková S., Marec F. (англ.) // Chromosome Research. — 2017. — Iss. 3—4 . — P. 241–252. — ISSN . — doi : .
  39. Qiu-Ning Liu, Xin-Yue Chai, Dan-Dan Bian, Chun-Lin Zhou, Bo-Ping Tang. (англ.) // Genome / A. Hilliker. — 2016. — Vol. 59. — Iss. 1 . — P. 37–49. — ISSN . — doi : . 7 июля 2020 года.
  40. Horak M. (англ.) // Australian journal of entomology. — 1994. — Vol. 33. — Iss. 3 . — P. 245–262. — ISSN . — doi : . 13 января 2022 года.
  41. Hill D. S. Agricultural Insect Pests of the Tropics and their Control. — Cambridge: Cambridge University Press, 1987. — P. 329. — 758 p.
  42. Fitch A. . — Albany: : C. Van Benthuysen, 1856. — 362 с.
  43. Scheff, D. S. . — P. 7. — 24 p. 13 января 2022 года.
  44. Соколов Е.А. Вредители запасов, их карантинное значение и меры борьбы. — Оренбург: Печатный дом "Димур", 2004. — С. 28. — 104 с.
  45. Hagstrum D., Klejdysz T., Subramanyam B., Nawrot J. Atlas of Stored-Product Insects and Mites. — Elsevier, 2017. — 589 p. — ISBN 978-1-891127-75-5 .
  46. Mostafiz M. M., Hassan E., Acharya R., Shim J.-K., Lee K.-Y. (англ.) // Insects. — 2020. — Vol. 12. — Iss. 1 . — P. 23. — ISSN . — doi : . 13 января 2022 года.
  47. Грушевой С.Е., Матвеенко Т.М. Меры борьбы с вредителями и плесневением табачного и махорочного сырья. — Москва, 1950. — С. 121—142.
  48. Шураева Г.П., Гвоздецкая С.Ф., Плотникова Т.В. Вредители табачного сырья, табачных изделий и семян и методы контроля их численности // Приоритетные направления развития науки и образования. — Пенза: Наука и просвещение, 2019. — С. 147—169 .
  49. Тоскнна И. Н., Проворова И. Н. Насекомые в музеях: Биология. Профилактика заражения. Меры борьбы. — Москва: Товарищество научных изданий КМК, 2007. — С. 205—206. — 242 с.
  50. Болезни и вредители пчел. — Москва: Агропромиздат, 1976. — С. 225. — 239 с.
  51. Ащеулов В. И., Пономарёв В. А. Инвазионные болезни, вредители запасов, хищники и разрушители гнезд шмелей в условиях теплиц // Вестник Костромского государственного университета. — 2014. — № 6 . — С. 45—48 .
  52. Pinckney R. D., Kanton K., Foster C. N., Steinberg H., Pellitteri P. (англ.) // Journal of medical entomology. — 2001. — Vol. 38. — Iss. 5 . — P. 725–727. — doi : .
  53. Bowditch T. G. (англ.) // Journal of Economic Entomology. — 1997. — Vol. 90. — Iss. 4 . — P. 1028–1031. — ISSN . — doi : .
  54. Scheff D., Sehgal B., Subramanyam B. (англ.) // Insects. — 2018-04-18. — Iss. 2 . — P. 42. — ISSN . — doi : . 13 января 2022 года.
  55. Бержец В. М., Радикова О. В., Кропотова И. С., Бержец А. И. Роль аллергенов из насекомых жилища в развитии аллергических заболеваний // Иммунопатология, аллергология, инфектология. — 2006. — № 2 . — С. 49—55 .
  56. Binder M., Mahler V., Hayek B., Sperr W. R., Schöller M. (англ.) // The journal of immunology. — 2001. — Vol. 167 , iss. 9 . — P. 5470–5477. — ISSN . — doi : .
  57. Hoflehner E., Binder M., Hemmer W., Mahler V., Panzani R. C. (англ.) // PLoS ONE. — 2012. — Vol. 7. — Iss. 7 . — P. e42026. — ISSN . — doi : .
  58. Федоскова Т. Г., Лусс Л. В. Аллергия к нежалящим насекомым: этиология, клиника, диагностика, лечение // Доктор.Ру.. — 2009. — Т. 46 , № 2 . — С. 22—29 .
  59. Федоскова Т. Г. Инсектная аллергия. Этиология, клиника, лечение // Аллергология и иммунология в педиатрии. — 2005. — Т. 7 , № 4 . — С. 19—27 .
  60. Юхтина Н. В. Инсектная аллергия у детей // Вопросы современной педиатрии. — 2003. — Т. 2 , № 3 . — С. 92—94 .
  61. Геворян И. С. Южная амбарная огневка (Plodia interpunctella Hübner, 1813) и экология человека // Пест-менеджмент. — 2020. — Т. 115 , № 3 . — С. 30—33 .
  62. Фейденгольд В .Б., Алексеева Л. В., Закладной Г. А. и др. Меры борьбы с потерями зерна при заготовках, послеуборочной обработке и хранении на элеваторах и хлебоприемных предприятиях. — Москва: ДеЛи принт, 2007. — 320 с.
  63. Drinkall M.J., Pye C.D., Bell C.H., Braithwaite M., Clack S.R. (англ.) // Using Cereal Science and Technology for the Benefit of Consumers. — Elsevier, 2005. — P. 245–249. — ISBN 978-1-84569-479-1 . — doi : . 8 июня 2018 года.
  64. Gautam S.G., Opit G.P., Konemann C., Shakya K., Hosoda E. (англ.) // Journal of Stored Products Research. — 2020. — Vol. 89. — P. 101690. — doi : . 15 июня 2022 года.
  65. Nansen C., Phillips T. W., Morton P. K., Bonjour E. L. (англ.) // Environmental entomology. — 2006. — Vol. 35. — Iss. 2 . — P. 516–523. — ISSN . — doi : .
  66. Boots M., Begon M. (англ.) // Functional ecology. — 1993. — Vol. 7. — Iss. 5 . — P. 528. — doi : . 13 января 2022 года.
  67. Hemmati S. A., Takalloo Z., Taghdir M., Mehrabadi M., Balalaei S. (англ.) // Pesticide biochemistry and physiology. — 2021. — Vol. 171. — P. 104730. — doi : . 2 августа 2022 года.
Источник —

Same as Южная амбарная огнёвка