Interested Article - Клеточное ядро

Клетки HeLa , ДНК окрашена синим красителем Hoechst . Центральная и правая клетка находятся в интерфазе , и у них окрашено всё ядро. Левая клетка претерпевает митоз , ядерная оболочка во время митоза находится в разобранном состоянии, а ДНК хромосом конденсирована.

Кле́точное ядро́ ( лат. nucleus ) — окружённая двумя мембранами важная структура ( органелла , компартмент ) эукариотической клетки . В клетках прокариот ядра нет. В клетках эукариот обычно одно ядро, однако некоторые типы клеток, например, эритроциты млекопитающих , не имеют ядра, а другие содержат несколько ядер.

В ядре заключена бо́льшая часть генетического материала клетки, представленного хромосомами , длинными линейными молекулами ДНК , связанными с белками . Генетический материал, локализованный в хромосомах, составляет ядерный геном . Ядро поддерживает целостность генетического материала, а входящие в его состав структуры управляют клеточными процессами, регулируя экспрессию генов , поэтому ядро является, по сути, контролирующим центром клетки. К основным структурам, из которых состоит ядро, относят хроматин , ядрышко , ядерную оболочку — двойную мембрану, окружающую ядро и изолирующую его от цитоплазмы , а также ядерный матрикс , который включает ядерную ламину — сеть филаментов , обеспечивающая механическую поддержку ядра, подобно цитоскелету в цитоплазме.

Поскольку ядерная оболочка непроницаема для крупных молекул, транспорт молекул через ядерную оболочку ( ) обеспечивают ядерные поры . Поры пронизывают обе ядерные мембраны и формируют сквозной канал, через который малые молекулы и ионы проходят свободно, а крупные молекулы активно транспортируются с участием белков-переносчиков. Перенос через ядерные поры таких крупных молекул, как белки и РНК , необходим для экспрессии генов, поддержания хромосом и сборки рибосомных субъединиц. Хотя внутри ядра нет окружённых мембраной субкомпартментов, его внутреннее содержимое неоднородно и содержит ряд ядерных телец, которые состоят из особых белков, молекул РНК и частей хромосом. Самое известное ядерное тельце — ядрышко , в котором происходит сборка рибосомных субъединиц. После образования в ядрышке рибосомные субъединицы транспортируются в цитоплазму, где они осуществляют трансляцию мРНК .

История изучения

Старейшее известное изображение клеток и их ядер, выполненное в 1719 году Антони ван Левенгуком

Ядро стало первой из органелл , открытых учёными-естествоиспытателями в составе клетки. Самые ранние рисунки клеток и их ядер принадлежат основоположнику научной микроскопии Антони ван Левенгуку (1633—1723), который наблюдал ядро в эритроцитах лосося . Описания ядра также выполнил в 1802 году , а более детальное описание было выполнено в 1831 году шотландским ботаником Робертом Броуном и представлено на собрании Лондонского Линнеевского общества . Броун изучал орхидеи под микроскопом и обнаружил в клетках наружного слоя цветка непрозрачные области, которые он называл «ареолами» или «ядрами» .

Броун не делал предположений относительно функций ядра. В 1838 году Маттиас Шлейден предположил, что ядро участвует в образовании новых клеток, поэтому он ввёл для обозначения ядер термин «цитобласт» (клеточный строитель). Он был уверен, что наблюдал сборку новых клеток вокруг «цитобластов». Убеждённым оппонентом этого взгляда был Франц Мейен , описавший клетки, размножающиеся посредством деления , и считавший, что у многих клеток может не быть ядра. Идея об образовании клеток , то есть с нуля, посредством цитобластов или иначе, противоречила работам Роберта Ремака (1852) и Рудольфа Вирхова (1855), которые окончательно утвердили новую парадигму, утверждающую, что клетки могут образовываться только из клеток («Omnis cellula e cellula»). Функции ядра оставались неясными .

Между 1877 и 1878 годами Оскар Гертвиг опубликовал несколько работ по оплодотворению яиц у морских ежей , в которых показал, что при оплодотворении ядро сперматозоида проникает внутрь яйцеклетки и сливается с её ядром. Впервые было показано, что новая особь развивается из единственной клетки, имеющей ядро. Это противоречило теории Эрнста Геккеля , согласно которой в ходе эмбрионального развития особи последовательно проходятся все этапы филогении её вида , а потому, в частности, поколение первых клеток с ядром якобы образуется из «монерулы» — бесструктурной массы первичной слизи. В связи с этим необходимость ядра сперматозоида для оплодотворения некоторое время была предметом дискуссий. Однако Гертвиг подтвердил свои наблюдения исследованиями на других животных, включая земноводных и моллюсков . В 1884 году Эдуард Страсбургер показал то же самое для растений. Это проложило путь к гипотезе о том, что ядро передаёт наследственный материал. В 1873 году Август Вейсман высказал идею о равнозначности материнского и отцовского материала для наследственности. Функция ядра как носителя генетической информации стала очевидной лишь позже, после открытия митоза и открытия заново законов Менделя в начале XX столетия. На основании этих открытий была сформулирована хромосомная теория наследственности .

Структуры

Различные структуры клеточного ядра видны из-за накопления в них зелёного флуоресцентного белка

Ядро — крупнейшая органелла животных клеток . У млекопитающих диаметр ядра составляет примерно 6 мкм , а само ядро составляет около 10 % объёма клетки . Вязкая жидкость, заполняющая ядро, называется нуклеоплазмой и по химическому составу близка к цитозолю , окружающему ядро .

Ядерная оболочка и ядерные поры

Строение клеточного ядра
Поперечный разрез ядерной поры. Цифрами обозначены: 1 — ядерная оболочка, 2 — внешнее кольцо, 3 — спицы, 4 — корзина, 5 — филаменты

Ядерная оболочка состоит из двух мембран (наружной и внутренней), которые расположены параллельно на расстоянии от 10 до 50 нм . Ядерная оболочка полностью окружает ядро, отделяя генетический материал клетки от цитоплазмы и служа барьером, предотвращающим свободную диффузию макромолекул между нуклеоплазмой и цитоплазмой . Наружная ядерная мембрана продолжается в мембрану шероховатого эндоплазматического ретикулума (ЭПР) и покрыта рибосомами . Промежуток между ядерными мембранами называется перинуклеарным пространством и продолжается в люмен ЭПР .

Ядерные поры, представляющие собой заполненные водой каналы в ядерной оболочке , состоят из множества белков, называемых нуклеопоринами . У человека масса пор составляет около 120 000 кДа ,что в 40 раз больше массы рибосомы ; при этом у дрожжей в состав ядерных пор входит около 50 белков, а у позвоночных — несколько сотен . Хотя диаметр пор составляет 100 нм , ширина щели, через которую могут проходить молекулы, из-за наличия внутри пор регуляторных систем составляет всего 9 нм . В такую щель могут проходить водорастворимые малые молекулы, но не крупные молекулы — такие, как нуклеиновые кислоты и большие белки; для переноса этих молекул в ядро необходим активный (то есть энергозатратный) транспорт. На оболочке ядра типичной клетки млекопитающего располагается от 3000 до 4000 пор , и у каждой в месте слияния двух ядерных мембран находится кольцевая структура, имеющая 8 осей симметрии . К кольцу прикрепляется особая структура, известная как ядерная корзина, которая выдаётся в нуклеоплазму, а несколько её филаментов выдаются в цитоплазму. Обе структуры необходимы для опосредования связывания транспортных ядерных белков .

Большинство белков, субъединицы рибосом и некоторые ДНК переносятся через ядерные поры посредством семейства транспортных факторов, известных как . Кариоферины, опосредующие транспорт в ядро, также называются , а опосредующие транспорт из ядра — экспортинами. Большинство кариоферинов непосредственно взаимодействуют со своим грузом, но некоторые используют для этого белки . Стероидные гормоны (такие, как кортизол и альдостерон ), а также другие жирорастворимые малые молекулы могут диффундировать в цитоплазму внутрь клетки через клеточную мембрану; в цитоплазме они связываются с белковыми ядерными рецепторами, которые доставляют их в ядро. Здесь ядерные рецепторы , связанные со своими лигандами, функционируют как транскрипционные факторы, а в отсутствие лиганда многие рецепторы функционируют как гистондеацетилазы , подавляющие экспрессию некоторых генов .

Ядерная ламина

Строение ядерной оболочки и ядерной ламины

В клетках животных механическую поддержку ядра обеспечивают две сети из промежуточных филаментов : ядерная ламина, представляющая собой сеть промежуточных филаментов на внутренней поверхности ядра, а также менее организованные филаменты на цитозольной поверхности ядра. Обе системы филаментов обеспечивают поддержку ядра и служат для закрепления хромосом и ядерных пор .

Ядерная ламина состоит в основном из белков, известных как ламины . Как и все белки, ламины синтезируются в цитоплазме и далее транспортируются внутрь ядра, где они вставляются в ядерную ламину . Расположенные на наружной стороне ядерной оболочки белки (такие, как ), связываются с элементами цитоскелета, что обеспечивает структурную поддержку ядру. Ламины также обнаруживаются в нуклеоплазме, где они образуют другую регулярную структуру, известную как нуклеоплазматическая вуаль ( англ. nucleoplasmic veil ) ; последнюю можно визуализировать с использованием флуоресцентной микроскопии . Функция вуали неизвестна, но известно, что её нет в ядрышке и она присутствует в интерфазе клеточного цикла . Входящие в состав вуали ламины (такие, как LEM3) связываются с хроматином , и нарушения в их структуре подавляют транскрипцию белоккодирующих генов .

Как и другие белки промежуточных филаментов, мономеры ламинов содержат α-спиральный домен , используемый двумя мономерами, чтобы обвиться вокруг друг друга, образуя димер , имеющий структуру . Два димера далее связываются своими боковыми сторонами в антипараллельной ориентации, образуя тетрамер, известный как протофиламент. Восемь тетрамеров объединяются в скрученный, похожий на верёвку филамент. Филаменты могут собираться и разбираться динамическим образом, то есть длина филамента зависит от относительных скоростей его сборки и разборки .

Хромосомы

Хромосомные территории 23 хромосом человека

В ядре находится большая часть генетического материала клетки, представленного линейными молекулами ДНК, которые организованы в структуры, известные как хромосомы . Суммарная длина молекул ДНК клетки человека составляет около 2 м . В течение интерфазы клеточного цикла данные молекулы в комплексе с белками формируют так называемый ядерный хроматин , а при клеточном делении хромосомы конденсируются и предстают в виде отдельных микроскопически различимых образований. Небольшое количество внеядерного клеточного генетического материала располагается в митохондриях и, в случае растительной клетки , в хлоропластах .

Известно два вида хроматина. В эухроматине ДНК наименее плотно организована; он содержит гены, которые транскрибируются наиболее часто . Другой вид хроматина, гетерохроматин , более компактен и содержит ДНК, транскрибируемую редко или никогда. Гетерохроматин подразделяется на факультативный, который формируется в части клеток в процессе развития , и конститутивный, присутствующий во всех клетках на всех стадиях развития и находящийся в основном в теломерных и околоцентромерных участках хромосом . В течение интерфазы хроматин каждой хромосомы занимает свою область ядра — хромосомную территорию , то есть, хроматин разных хромосом не перемешивается . Активные гены, которые, как правило, располагаются в эухроматине, обычно располагаются на границе хромосомной территории .

Ядерные тельца

В ядре клеток млекопитающих содержится ряд дискретных субкомпартментов , которые называются ядерными тельцами. Они осуществляют компартментализацию ядра, создавая внутри него отдельные пространства, которые обладают определёнными свойствами. Многие ядерные тельца осуществляют специфические функции — например, синтез и процессинг пре-рибосомных РНК в ядрышке, накопление и сборку компонентов сплайсосом в спеклах (см. ниже) или накопление молекул РНК в параспеклах . Механизмы, которые обеспечивают выполнение ядрышковыми тельцами этих функций, очень разнообразны. В некоторых случаях ядерное тельце может служить местом протекания определённых процессов, например, транскрипции. В других случаях ядерные тельца, по-видимому, опосредованно регулируют локальные концентрации своих компонентов в нуклеоплазме. Подобно цитоплазматическим органеллам, ядерные тельца содержат специфический набор белков, которые определяют их структуру на молекулярном уровне. Однако, в отличие от органелл цитоплазмы, ядерные тельца не окружены липидными мембранами, и их структурная целостность целиком обеспечивается белок-белковыми и РНК-белковыми взаимодействиями. Ниже в таблице перечислены основные характеристики ядерных телец .

Ядерное тельце Функции Характерные компоненты Типичный размер (в мкм) Количество на ядро
Ядрышко Биогенез рибосом Машинерия , факторы процессинга рРНК и сборки рибосомных субъединиц 3—8 1—4
Спеклы Накопление и сборка факторов сплайсинга Факторы сплайсинга пре-мРНК 2—3 20—50
Стрессовые ядерные тельца Регуляция транскрипции и сплайсинга в условиях стресса , HAP 1—2 3—6
Тельце гистоновых локусов Процессинг пре-мРНК гистонов , FLASH, мяРНП 0,2—1,2 2—4
Тельце Кахаля Биогенез, созревание и кругооборот малых РНК Коилин , 0,2—1,5 1—10
PML-тельце Регуляция стабильности генома, репарация ДНК , контроль транскрипции, защита от вирусов PML 0,1—1 10—30
Параспеклы Регуляция мРНК, редактирование РНК Некодирующие РНК NEAT1/MENε/β, белки PSP1, p54 nrb /NONO 0,2—1 2—20
Околоядрышковый компартмент Посттранскрипционная регуляция набора РНК, синтезированных РНК-полимеразой III PTB 0,2—1 1—2

Ядрышко

Электронная микрофотография клеточного ядра, ядрышко темно окрашено

Ядрышко — это отдельная плотная структура в ядре. Она не окружена мембраной и формируется в области расположения рДНК — тандемных повторов генов рибосомной РНК (рРНК) , называемых ядрышковыми организаторами . Главная функция ядрышка — синтез рРНК и образование рибосом. Структурная целостность ядрышка зависит от его активности, и инактивация генов рРНК приводит к смешению ядрышковых структур .

На первой стадии образования рибосом фермент РНК-полимераза I транскрибирует рДНК и образует пре-рРНК, которая далее разрезается на 5,8S, 18S и 28S рРНК . Транскрипция и посттранскрипционный процессинг рРНК происходят в ядрышке при участии малых ядрышковых РНК (snoРНК), некоторые из которых происходят из сплайсированных интронов мРНК генов, кодирующих белки, связанные с работой рибосом. Собранные рибосомные субъединицы — это самые крупные структуры, проходящие через ядерные поры .

При рассматривании под электронным микроскопом в ядрышке можно выделить три компонента: фибриллярные центры (ФЦ), окружающий их плотный фибриллярный компонент (ПФК) и гранулярный компонент (ГК), который, в свою очередь, окружает ПФК. Транскрипция рРНК происходит в ФЦ и на границе ФЦ и ПФК, поэтому при активации образования рибосом ФЦ становятся хорошо различимы. Разрезание и модификации рРНК происходят в ПФК, а последующие этапы образования рибосомных субъединиц, включающие загрузку рибосомных белков, происходят в ГК .

Тельце Кахаля

Ядра клеток мыши (синие), содержащие тельца Кахаля (зелёные точки). Изображение получено методом флуоресцентной микроскопии (коилин — маркер телец Кахаля — сращён с зелёным флуоресцентным белком)

Тельце Кахаля (ТК) — ядерное тельце, имеющееся у всех эукариот. Оно идентифицируется по наличию сигнатурного белка коилина и специфических РНК (scaРНК). В ТК также содержится белок SMN ( англ. survival of motor neurons ). В ТК наблюдается высокая концентрация сплайсирующих малых ядерных рибонуклеопротеинов (мяРНП) и других факторов процессинга РНК, поэтому считается, что ТК служат местами сборки и/или посттранскрипционной модификации факторов сплайсинга. ТК присутствует в ядре во время интерфазы, но исчезает в митозе. В биогенезе ТК прослеживаются свойства самоорганизующейся структуры .

Когда внутриклеточная локализация SMN впервые изучалась методом иммунофлуоресценции , то белок обнаруживался во всей цитоплазме, а также в ядрышковом тельце, сходном по размеру с ТК и часто расположенном рядом с ТК. По этой причине данное тельце было названо «близнецом ТК» ( англ. gemini of CB ) или просто gem. Однако оказалось, что линия клеток HeLa , в которой было открыто новое тельце, была необычной: в других линиях клеток человека, а также у плодовой мушки Drosophila melanogaster SMN колокализовался с коилином в ТК. Поэтому в общем случае SMN можно рассматривать как важный компонент ТК, а не как маркер отдельного ядерного тельца .

Тельце гистоновых локусов

Тельце гистоновых локусов ( англ. histone locus body, HLB ) содержит факторы, необходимые для процессинга пре-мРНК гистонов. Как и следует из названия, тельца гистоновых локусов ассоциированы с генами, кодирующими гистоны; поэтому предполагается, что в тельцах гистоновых локусов концентрируются факторы сплайсинга. Тельце гистоновых локусов присутствует в клетке во время интерфазы и исчезает с наступлением митоза. Тельце гистоновых локусов нередко рассматривается вместе с тельцем Кахаля по нескольким причинам. Во-первых, в некоторых тельцах гистоновых локусов содержится маркер телец Кахаля — коилин. Во-вторых, эти тельца нередко физически находятся рядом, поэтому между ними наблюдается некоторое взаимодействие. Наконец, очень крупные тельца Кахаля ооцитов земноводных обладают свойствами обоих телец .

PML-тельца

Тельца промиелоцитной лейкемии ( англ. Promyelocytic leukaemia bodies ), или PML-тельца — сферические тельца, разбросанные по всей нуклеоплазме и достигающие около 0,1—1,0 мкм в диаметре. Они известны также под такими названиями, как ядерный домен 10 ( англ. nuclear domain 10 (ND10) ), тельца Кремера ( англ. Kremer bodies ) и онкогенные домены PML ( англ. PML oncogenic domains ). Тельца PML названы по одному из своих ключевых компонентов — белку промиелоцитной лейкемии (PML). Они часто наблюдаются ассоциированными с тельцами Кахаля и тельцами деления ( англ. cleavage body ) . PML-тельца принадлежат ядерному матриксу и могут быть задействованы в таких процессах, как репликация ДНК , транскрипция и эпигенетический сайленсинг генов . Ключевым фактором организации этих телец выступает белок PML, который привлекает другие белки; последние, по современным представлениям, объединены лишь тем, что они SUMOилированы . Мыши , у которых ген PML делетирован , лишены PML-телец, однако развиваются и живут нормально, поэтому PML-тельца не выполняют незаменимых биологических функций .

Спекл

Спеклы ( англ. speckle ) — это ядерные тельца, которые содержат факторы сплайсинга пре-мРНК и располагаются в интерхроматиновых участках нуклеоплазмы клеток млекопитающих. При флуоресцентной микроскопии спеклы выглядят как пятнистые тельца неправильной формы, различных размеров, а при электронной микроскопии они выглядят как кластеры интерхроматиновых гранул. Спеклы — динамические структуры, и содержащиеся в них белки и РНК могут перемещаться между спеклами и другими ядерными тельцами, включая участки активной транскрипции. На основании исследований состава, структуры и поведения спеклов была создана модель, объясняющая функциональную компартментализацию ядра и организацию машинерии экспрессии генов , сплайсирующих малые ядерные рибонуклеопротеины и другие белки, необходимые для сплайсинга пре-мРНК . Из-за изменяющихся потребностей клетки состав и расположение спеклов изменяется согласно транскрипции мРНК и посредством регуляции фосфорилирования специфических белков . Сплайсирующие спеклы также известны как ядерные спеклы, компартменты сплайсирующих факторов, кластеры интерхроматиновых гранул и B-снурпосомы ( англ. B snurposomes ) . B-снурпосомы найдены в ядрах ооцитов земноводных и зародышах плодовой мушки Drosophila melanogaster . На электронных микрофотографиях B-снурпосомы предстают прикреплёнными к тельцам Кахаля или отдельно от них. Кластеры интерхроматиновых гранул служат местами скопления факторов сплайсинга .

Параспеклы

Микрофотография клеток HeLa с меченым белком параспекл PSP1: 1. цитоплазма; 2. ядро; 3. ядрышко; 4. параспеклы

Параспеклы — это ядерные тельца неправильной формы, располагающиеся в интерхроматиновом пространстве ядра . Впервые они были описаны у клеток HeLa, у которых имеется 10—30 параспеклов на ядро, но сейчас параспеклы обнаружены во всех первичных клетках человека, в клетках трансформированных линий и на срезах тканей . Своё название они получили из-за своего расположения в ядре — вблизи спеклов .

Параспеклы — динамические структуры, которые изменяются в ответ на изменения в метаболической активности клетки. Они зависят от транскрипции , и в отсутствие транскрипции, проводимой РНК-полимеразой II , параспеклы исчезают, а все входящие в их состав белки (PSP1, p54nrb, PSP2, CFI(m)68 и PSF) формируют серповидный околоядрышковый кэп . Этот феномен наблюдается в ходе клеточного цикла: параспеклы присутствуют в интерфазе и всех фазах митоза, за исключением телофазы . В ходе телофазы формируются дочерние ядра, и РНК-полимераза II ничего не транскрибирует, поэтому белки параспеклов и формируют околоядрышковый кэп . Параспеклы участвуют в регуляции экспрессии генов, накапливая те РНК, где есть двухцепочечные участки, которые подвергаются редактированию, а именно превращению аденозина в инозин . Благодаря этому механизму параспеклы задействованы в контроле экспрессии генов при дифференцировке , вирусной инфекции и стрессе .

Околоядрышковый компартмент

Околоядрышковый компартмент (ОК) — ядерное тельце неправильной формы, которое характеризуется тем, что располагается на периферии ядрышка. Несмотря на физическую связь, эти два компартмента структурно различны. Обычно ОК обнаруживают в клетках злокачественных опухолей . ОК — динамическая структура, и содержит очень много РНК-связывающих белков и РНК-полимеразу III. Структурная стабильность ОК обеспечивается транскрипцией, осуществляемой РНК-полимеразой III, и наличием ключевых белков. Поскольку присутствие ОК обычно связано со злокачественностью и со способностью к метастазированию , их рассматривают как потенциальные маркеры рака и других злокачественных опухолей. Показана ассоциация ОК со специфическими локусами ДНК .

Стрессовые ядерные тельца

Стрессовые ядерные тельца формируются в ядре при тепловом шоке. Они образуются при непосредственном взаимодействии транскрипционного фактора теплового шока 1 ( ) и перицентрических тандемных повторов в последовательности сателлита III, что соответствует сайтам активной транскрипции некодирующих транскриптов сателлита III. Распространено мнение, что такие тельца соответствуют очень плотно упакованным формам рибонуклеопротеиновых комплексов. Считается, что в клетках, подвергающихся стрессу, они участвуют в быстрых, временных и глобальных изменениях в экспрессии генов посредством различных механизмов — например, ремоделирования хроматина и захватывания факторов транскрипции и сплайсинга. В клетках, находящихся в нормальных (не стрессовых) условиях, стрессовые ядерные тельца обнаруживаются редко, однако их количество резко увеличивается под действием теплового шока. Стрессовые ядерные тельца найдены только в клетках человека и других приматов .

Ядерные тельца-сироты

Ядерные тельца-сироты ( англ. orphan nuclear bodies ) — нехроматиновые ядерные компартменты, которые исследованы гораздо хуже, чем другие хорошо охарактеризованные структуры ядра. Некоторые из них выступают как места, в которых белки модифицируются белками SUMO и/или происходит протеасомная деградация белков, помеченных убиквитином . Ниже в таблице приведены характеристики известных ядерных телец-сирот .

Ядерное тельце Описание Типичный размер (в мкм) Количество на ядро
Кластосома Концентрирует протеасомные комплексы 20S и 19S и белки, связанные с убиквитином. Обнаруживается, главным образом, тогда, когда стимулируется активность протеасом, и разбирается при ингибировании активности протеасом. 0,2—1,2 0—3
Тельце деления ( англ. cleavage body ) Обогащено факторами деления и , а также белком , содержащим . Обнаруживается в основном в S-фазе , ингибирование транскрипции на него не влияет. 0,2—1,0 1—4
Домен OPT Обогащён факторами транскрипции и PTF. Частично колокализуется с сайтами транскрипции. Обнаруживается в основном в поздней G1-фазе , разбирается при ингибировании транскрипции. 1,0—1,5 1—3
Тельце Polycomb Обнаруживается в клетках человека и дрозофилы, обогащено белком PcG . У человека накапливает белки RING1 , , HPC, может быть связано с околоцентромерным гетерохроматином. 0,3—1,0 12—16
Тельце Sam68 Накапливает белок Sam68 и схожие с ним белки SLM-1 и SLM-2. Разбирается при ингибировании транскрипции. Вероятно, обогащено РНК. 0,6—1,0 2—5
Тельце SUMO Обогащено белками SUMO и SUMO-конъюгирующим ферментом . Концентрирует транскрипционные факторы p CREB , CBP , . 1—3 1—3

Функции

Ядерная оболочка защищает ДНК клетки и участвует в гораздо более сложной регуляции экспрессии генов по сравнению с прокариотической клеткой. У прокариот транскрипция и трансляция являются сопряжёнными процессами и трансляция мРНК в белок начинается ещё до того, как она будет полностью синтезирована. В клетках эукариот цитоплазма, в которой проходит трансляция, и транскрипция, протекающая в ядре, пространственно разобщены, поэтому возникает необходимость в обеспечении транспорта молекул между ядром и цитоплазмой .

Микрофотография транскрипции генов рРНК

Ядерная оболочка даёт ядру возможность контролировать своё содержимое и отделяет его от остальной цитоплазмы. Это имеет важное значение для регуляции процессов, протекающих по обе стороны ядерной оболочки. Когда цитоплазматический процесс должен быть как-то ограничен, то обычно его ключевой участник переносится в ядро, где он взаимодействует с факторами транскрипции и таким образом запускает подавление образования некоторых ферментов, задействованных в цитоплазматическом процессе. Например, такой регуляторный механизм имеется у гликолиза — процесса, в ходе которого клетка извлекает энергию из молекулы глюкозы . Первую реакцию гликолиза осуществляет фермент гексокиназа , преобразуя молекулу глюкозы в глюкозо-6-фосфат . Когда концентрация фруктозо-6-фосфата (вещества, в ходе гликолиза образующегося из глюкозо-6-фосфата) возрастает, регуляторный белок отправляет гексокиназу в ядро , где она формирует транскрипционный репрессирующий комплекс, который подавляет экспрессию генов, кодирующих ферменты гликолиза .

Чтобы контролировать, какие именно гены транскрибируются, в клетке транскрипционные факторы не имеют физического доступа к ДНК, пока они не будут активированы в ходе определённого сигнального пути . Это предотвращает даже низкую экспрессию неправильных генов. В частности, в случае контролируемых NF-κB генов, которые принимают участие в воспалительном процессе , транскрипция индуцируется под действием сигнального пути, например, начинающегося со связывания сигнальной молекулы TNF-α со своим рецептором на клеточной мембране и в конце концов приводящего к активации фактора транскрипции NF-κB. Сигнал ядерной локализации , имеющийся у NF-κB, позволяет ему проходить в ядро и из него через ядерные поры; в ядре он стимулирует транскрипцию генов-мишеней .

Компартментализация предотвращает транскрипцию клеткой несплайсированной мРНК. Эукариотические мРНК содержат интроны, которые должны быть удалены до того, как начнётся трансляция мРНК. Сплайсинг, то есть удаление интронов, протекает в ядре, что предотвращает доступ к пре-мРНК рибосом, находящихся вне ядра. Если бы ядра не было, то рибосомы начинали бы транслировать незрелые мРНК, что привело бы к образованию неправильных белковых продуктов .

Поскольку транскрипция протекает в ядре, ядро содержит множество белков, непосредственно участвующих в транскрипции или регулирующих этот процесс. К этим белкам относятся хеликазы , которые расплетают двойную спираль ДНК, облегчая доступ к ней других белков, РНК-полимеразы , которые синтезируют РНК, топоизомеразы , влияющие на топологию ДНК, а также разнообразные факторы транскрипции .

Ядерный транспорт

Схема ядерного транспорта и цикла ГТФазы Ran

Выход из ядра и вход в ядро крупных молекул контролируется ядерными порами. Хотя малые молекулы могут проникать в ядро без всякой регуляции, макромолекулы — такие, как белки и РНК — должны связаться с кариоферинами для транспорта в ядро (импортинами) и из ядра (экспортинами). Белки, которые должны быть транспортированы из цитоплазмы в ядро, содержат особую аминокислотную последовательность, известную как сигнал ядерной локализации, с которой связываются импортины. Аналогичным образом белки, которые должны выйти из ядра, содержат , распознаваемый экспортинами. Способность импортинов и экспортинов переносить свой груз регулируется ГТФазами — ферментами, которые гидролизуют ГТФ с высвобождением энергии . Ключевая ГТФаза ядерного транспорта — , которая может связываться с ГТФ или ГДФ , в зависимости от своего местонахождения (в ядре или в цитоплазме). В ядре взаимодействие Ran-ГТФ с импортином вызывает конформационные изменения в последнем, так что он отделяется от переносимого груза. Образованный комплекс Ran-ГТФ и импортина транспортируется в цитоплазму, где белок RanBP отделяет Ran-ГТФ от импортина. Отделение от импортина позволяет белку связаться с Ran-ГТФ и катализировать гидролиз ГТФ до ГДФ. Далее комплекс Ran-GDP распознаётся белком , который возвращает его в нуклеоплазму. В ядре белок заменяет ГДФ на ГТФ, образуя Ran-ГТФ и замыкая цикл .

Ядерный экспорт осуществляется похожим образом. В ядре экспортин связывается с белком-грузом и Ran-ГТФ и переносится через ядерную пору в цитоплазму, где комплекс диссоциирует . Ran-ГТФ гидролизует ГТФ до ГДФ под действием GAP, и комплекс Ran-ГДФ переносится в ядро, где ГДФ заменяется на ГТФ . Для транспорта через ядерную оболочку зрелых мРНК и тРНК также существуют специальные белки .

Сборка и разборка

В течение жизни клетки ядро может быть разобрано (при делении клетки или при апоптозе ). В ходе этих процессов структурные компоненты ядра — ядерная оболочка и ядерная ламина — разрушаются. В большинстве клеток разборка ядра наблюдается в профазе митоза. Однако разборка ядра не приурочена строго к митозу и происходит не во всех клетках. Некоторые одноклеточные эукариоты (например, дрожжи ) подвергаются так называемому закрытому митозу, при котором ядерная оболочка остаётся целой. При закрытом митозе хромосомы перемещаются к разным сторонам ядра, которое потом делится надвое. Клетки высших эукариот, напротив, обычно подвергаются открытому митозу, в ходе которого ядерная оболочка распадается. Хромосомы мигрируют к разным полюсам веретена деления , и вокруг них заново формируются два ядра. Ядерная ламина тоже подвергается разборке из-за фосфорилирования ламинов такими киназами , как . Сборка ядерной ламины в дочерних ядрах начинается после дефосфорилирования ламинов .

Апоптоз — это контролируемый процесс разрушения клеточных компонентов, приводящего к гибели клетки. Перемены, связанные с апоптозом, происходят непосредственно с ядром и его содержимым. К их числу относится конденсация хроматина, а также дезинтеграция ядерной оболочки и ядерной ламины. Разрушение сети ламинов происходит с участием апоптотических протеаз , известных как каспазы , которые разрушают ламины и, таким образом, влияют на структурную целостность ядра. Разрушение ламинов иногда используется в качестве индикатора активности каспаз в исследованиях, посвящённых апоптозу. Клетки, в которых экспрессируются мутантные ламины, устойчивые к действию каспаз, при апоптозе не утрачивают целостность ядра, поэтому ламины играют ключевую роль в начале изменений, которое претерпевает ядро при апоптозе . Кроме того, ингибирование сборки ламинов в сеть запускает апоптоз .

Особенности ядер у различных эукариот

Размеры, формы и морфология ядер эукариот изменяются в самых широких пределах. Если у пироплазмид и лейшманий диаметр ядра составляет 1—3 мкм , то у некоторых радиолярий ядра в диаметре достигают 400 мкм и даже 1 мм . Как правило, форма ядра у большинства эукариот близка к сферической, но иногда она способна принимать довольно причудливые очертания (это, в частности, относится к макронуклеусам инфузорий). Хотя у всех эукариот оболочка ядра состоит из двух мембран, число пор в ней у различных видов сильно варьирует, причём иногда к ней (как снаружи, так и изнутри) могут примыкать дополнительные слои; например, у многих свободноживущих амёб к внутренней стороне оболочки прилегает фиброзный слой с ячеистым строением, который значительно превосходит ядерную оболочку по толщине, а у радиолярий с внешней стороны оболочки располагаются дополнительные фибриллярные слои .

Значительным своеобразием отличается организация ядра у протистов из типа динофлагеллят (Dinoflagellata). Большинство их представителей имеет ядро, в котором хромосомы на протяжении всего клеточного цикла (в том числе и в интерфазе ) и практически лишены гистонов . Такой тип ядра получил название динокарион . При этом количество ДНК в динокарионе в десятки и сотни раз превосходит количество ДНК, приходящееся на клетку у представителей других групп эукариот . Впрочем, некоторые динофлагелляты ( Noctiluca , ) имеют обычные эукариотические ядра ; у других представителей типа в вегетативных клетках ядра обычные, а динокарион присутствует на других стадиях клеточного цикла (например, в гаметах) .

Безъядерные эритроциты млекопитающих

Клетки протистов обладают по крайней мере одним ядром . В то же время в организмах Metazoa встречаются и безъядерные клетки, которые, не имея ядра, утратили способность делиться с образованием двух дочерних клеток. Наиболее известным примером безъядерных клеток являются эритроциты млекопитающих, в которых отсутствуют и другие органеллы — такие, как митохондрии . Эритроциты созревают в костном мозге в процессе эритропоэза , в ходе которого они утрачивают ядра, другие органеллы и рибосомы. Ядро выталкивается из клетки при процессе дифференцировки эритробласта в ретикулоцит , который выступает непосредственным предшественником эритроцита . Под действием некоторых мутагенов в кровь могут выпускаться незрелые эритроциты, содержащие микроядра .

Большинство протистов имеет только одно ядро; у протистов, для которых характерен сложный жизненный цикл (например, у представителей типа апикомплексы (Apicomplexa) встречаются одноядерные и многоядерные стадии .

Многоядерные клетки протистов

В ряде групп протистов клетки имеют несколько ядер на протяжении всей жизни; при этом многоядерные формы протистов способны достигать крупных размеров — порядка нескольких сантиметров в диаметре (в исключительных случаях — до метра и более) . Так, большинство представителей отряда дипломонад и, в частности, лямблии — хорошо известные паразиты кишечника млекопитающих и птиц из рода Giardia — имеют два функционально эквивалентных ядра, которые наследуются независимо в ходе митоза . У представителей рода (тип ) клетка содержит от 2 до 16 идентичных ядер. У жгутиконосцев из класса опалины (Opalinea) клетки также содержат несколько одинаковых ядер; их число существенно различается на различных стадиях жизненного цикла опалин. Много ядер у некоторых представителей отряда , причём количеству ядер соответствует и количество имеющихся в клетке .

Макронуклеус и микронуклеус у инфузории Paramecium caudatum (показаны коричневым цветом)

В составе хлоропластов у криптофитовых и хлорарахниофитовых водорослей присутствует нуклеоморф — редуцированное ядро фототрофного эндосимбионта , инкорпорированного предками данных водорослей в ходе вторичного эндосимбиоза (у Cryptophyta происходила инкорпорация красной , а у Chlorarachnea — зелёной водоросли) .

У инфузорий и некоторых фораминифер наблюдается феномен ядерного дуализма, при котором в клетке присутствуют ядра двух типов: генеративный микронуклеус и вегетативный макронуклеус . При этом настоящий ядерный дуализм, при котором клетка содержит один или несколько мелких микронуклеусов и один или несколько крупных макронуклеусов, характерен для инфузорий и для определённых стадий (агамонтов) некоторых фораминифер (например, у Rotaliella heterokaryotica ) ; вообще же клетки или плазмодии фораминифер содержат от одного до нескольких тысяч ядер . В клетках инфузорий может быть как один, так и несколько микронуклеусов; это справедливо и для макронуклеусов. Микронуклеусы диплоидны , и именно в них происходит генетическая рекомбинация. Для макронуклеусов же характерен высокий уровень амплификации генов (так, у Paramecium tetraurelia уровень плоидности макронуклеуса составляет 1000—2000); впрочем, у инфузорий из класса микро- и макронуклеусы содержат почти одинаковый диплоидный набор ДНК. Макронуклеусы ответственны за клеточный метаболизм и являются местом синтеза РНК. В ходе деления клетки старые макронуклеусы обычно дегенерируют, новые же развиваются путём модификации микронуклеусов . Дифференцировка ядер на генеративные и вегетативные имеет место также у миксоспоридий (Myxosporea) и большинства акантарий (Acantharea); у последних такая дифференцировка происходит перед инцистированием : одно полиплоидное ядро даёт начало сначала вегетативным ядрам, а затем — генеративным, число которых в клетке в результате неоднократных делений достигает сотен .

Многоядерные клетки высших эукариот

Распространено и наличие двух ядер в клетках мицелия у грибов (особенно у образующих микоризу ) и в клетках сближаемых в современных классификациях с грибами микроспоридий . Данное явление известно как дикарион , или диплокарион . Встречающиеся у многих грибов несептированные гифы также, по существу, представляют собой гигантские многоядерные клетки .

У семенных растений тоже возможно появление многоядерных клеток. Например, многоядерную стадию развития проходят клетки эндосперма покрытосеменных (после двойного оплодотворения ) и женского гаметофита голосеменных (после мейоза ). В ряде случаев появление тканей с многоядерными клетками оказывается следствием механического или биохимического воздействия на организм растения-хозяина, оказанного паразитирующими на нём насекомыми . У многих покрытосеменных многоядерными являются клетки — слоя в пыльнике , ответственного за снабжение пыльцевых зёрен питательными веществами .

У человека и других позвоночных клетки скелетной мускулатуры ( миоциты ) сливаются с образованием многоядерного синцития . В нём ядра оттеснены к периферии, что даёт возможность занять внутреннее пространство сократимыми миофибриллами . Многоядерными также являются остеокласты — клетки костной ткани позвоночных, ответственные за её резорбцию ; в норме у млекопитающих они содержат от 2 до 30 ядер (в среднем — от 3 до 10), а при некоторых болезнях, которым сопутствует увеличение костной резорбции (при синдроме Педжета — Шрёттера , ревматоидном артрите и др.), остеокласты увеличиваются в размерах и число ядер в них возрастает (при синдроме Педжета — Шрёттера они могут содержать до 100 ядер) . Многоядерные клетки у человека и животных могут образовываться и при других патологических процессах. Так, слияние макрофага и моноцита с образованием гигантских многоядерных клеток происходит при воспалении , а также может говорить об образовании опухоли .

Происхождение ядра

Клеточное ядро является важнейшей чертой эукариотических организмов, отличающей их от бактерий и архей . Несмотря на значительный прогресс в цитологии и молекулярной биологии, происхождение ядра не выяснено и является предметом научных споров. Выдвинуто 4 основных гипотезы происхождения клеточного ядра, но ни одна из них не получила широкой поддержки .

Гипотеза, известная как синтропная модель, предполагает, что ядро возникло в результате симбиотических взаимоотношений между археей и бактерией (ни археи, ни бактерии не имеют оформленных клеточных ядер). По этой гипотезе, симбиоз возник, когда древняя архея (сходная с современными метаногенными археями ), проникла в бактерию (сходную с современными миксобактериями ). Впоследствии архея редуцировалась до клеточного ядра современных эукариот. Эта гипотеза аналогична практически доказанным теориям происхождения митохондрий и хлоропластов , которые возникли в результате эндосимбиоза прото-эукариот и аэробных бактерий . Как свидетельство в пользу данной гипотезы рассматривается наличие у эукариот и архей одинаковых генов (в частности, генов гистонов ). Кроме того, миксобактерии быстро передвигаются, могут образовывать многоклеточные структуры и имеют киназы и G-белки , близкие к эукариотическим .

Клетка бактерии из группы планктомицетов . N — нуклеоид, NE — оболочка нуклеоида

Согласно второй гипотезе, прото-эукариотическая клетка эволюционировала из бактерии без стадии эндосимбиоза. Доказательством модели является существование современных бактерий группы Planctomycetes , которые имеют ядерные структуры с примитивными порами и другие клеточные компартменты, ограниченные мембранами (ничего похожего у других прокариот не обнаружено) .

Согласно гипотезе вирусного эукариогенеза , окружённое мембраной ядро, как и другие эукариотические элементы, возникли вследствие инфекции прокариотической клетки вирусом. Это предположение основывается на наличии общих черт у эукариот и некоторых вирусов, а именно генома из линейных цепей ДНК, кэпирования мРНК и тесного связывания генома с белками ( гистоны эукариот принимаются аналогами вирусных ДНК-связывающих белков). По одной версии, ядро возникло при фагоцитировании (поглощении) клеткой большого ДНК-содержащего вируса . По другой версии, эукариоты произошли от древних архей, инфицированных поксвирусами . Эта гипотеза основана на сходстве ДНК-полимеразы современных поксвирусов и эукариот . Также предполагается, что нерешённый вопрос о происхождении пола и полового размножения может быть связан с вирусным эукариогенезом .

Четвёртая, самая новая гипотеза, названная экзомембранной гипотезой, утверждает, что ядро произошло от одиночной клетки, которая в процессе эволюции выработала вторую внешнюю клеточную мембрану; первичная клеточная мембрана после этого превратилась в ядерную мембрану, и в ней образовалась сложная система поровых структур ( ядерных пор ) для транспорта клеточных компонентов, синтезированных внутри ядра .

Клиническое значение

Нормальная ядерная ламина (a и b) и мутантная ядерная ламина от пациента с прогерией (c и d). Обратите внимание на неправильную форму ядер у больного прогерией

Мутации , затрагивающие белки различных компонентов ядра, нередко приводят к заболеваниям. Так, мутации, которые затрагивают ламины, приводящие к нарушениям в сборке филаментов ядерной ламины, лежат в основе группы редких наследственных заболеваний, известных как . Наиболее изучена группа ламинопатий, выступающих под общим названием прогерия . У больных прогерией наблюдается преждевременное старение, однако биохимические основы такого фенотипа неясны .

Наличие в крови антител к некоторым белкам хроматина, например, нуклеосомным комплексам, обусловливает аутоиммунные заболевания — такие, как системная красная волчанка . Данные антитела известны под названием , и их наличие также может быть связано с рассеянным склерозом как частью общего расстройства иммунной системы . Как и в случае прогерии, биохимическая подоплёка таких симптомов неясна .

Мутации в белках ядрышка часто приводят к различным раковым заболеваниям . Если в ядрышке проявляются дефекты образования рибосом, то наблюдаются заболевания, известные как . Нарушения в других ядерных тельцах тоже могут приводить к болезням. Так, присутствие в ядре маленьких палочек часто выявляется в случаях . Это заболевание обусловлено мутациями в гене актина , и сами палочки состоят из мутантного актина и других белков цитоскелета .

В норме ядерная оболочка служит барьером, который препятствует проникновению в ядро различных вирусов. Некоторым вирусам для репликации и/или сборки необходимы белки, находящиеся внутри ядра. Сборка и репликация ДНК-содержащих вирусов (это, например, герпесвирусы ) происходит внутри ядра, и вирионы покидают его, отпочковываясь от внутренней ядерной мембраны. Этот процесс сопровождается разборкой ядерной ламины с обращённой к ядру стороны внутренней ядерной мембраны .

Примечания

  1. Клетки / под ред. Б. Льюина и др. — М. : Бином, 2011. — С. 21—22. — ISBN 978-5-94774-794-2 .
  2. // Биологический энциклопедический словарь / Гл. ред. М. С. Гиляров ; Редкол.: А. А. Баев , Г. Г. Винберг , Г. А. Заварзин и др. — М. : Сов. энциклопедия , 1986. — С. 430. — 831 с. — 100 000 экз.
  3. , с. 406.
  4. Leeuwenhoek, A. van. . Opera Omnia, seu Arcana Naturae ope exactissimorum Microscopiorum detecta, experimentis variis comprobata, Epistolis ad varios illustres viros. J. Arnold et Delphis, A. Beman, Lugdinum Batavorum 1719—1730. Cited after: Dieter Gerlach, Geschichte der Mikroskopie. — Frankfurt am Main: Verlag Harri Deutsch, 2009. — ISBN 978-3-8171-1781-9 .
  5. Harris H. . The Birth of the Cell. — New Haven: Yale University Press, 1999. — xii + 212 p. — ISBN 0-300-07384-4 .
  6. Brown, Robert. On the Organs and Mode of Fecundation of Orchidex and Asclepiadea // Miscellaneous Botanical Works, I. — 1866. — P. 511—514.
  7. Cremer, Thomas. . Von der Zellenlehre zur Chromosomentheorie. — Berlin e. a.: Springer Verlag, 1985. — 384 S. — (Veröffentlichungen aus der Forschungsstelle für Theoretische Pathologie der Heidelberger Akademie der Wissenschaften). — ISBN 3-540-13987-7 .
  8. Lodish H., Berk A., Matsudaira P., Kaiser C. A., Krieger M., Scott M. P., Zipursky S. L., Darnell J. . . — N. Y. : W. H. Freeman, 2004. — ISBN 0-7167-2672-6 .
  9. Bruce Alberts, Alexander Johnson, Julian Lewis, Martin Raff, Keith Roberts, Peter Walter. . Molecular Biology of the Cell. 4th edition. — Garland Science, 2002. — Chapter 4, p. 191–234.
  10. Clegg J. S. // The American Journal of Physiology. — 1984. — Vol. 246, no. 2 (Pt. 2). — P. 133—151. — . [ ]
  11. Paine P. L., Moore L. C., Horowitz S. B. // Nature . — 1975. — Vol. 254, no. 5496. — P. 109—114. — doi : . — . [ ]
  12. , с. 418.
  13. Rhoades R., Pflanzer R. G. . . — Fort Worth: Saunders College Publishing, 1996. — xxx + 978 p. — ISBN 0-030-05159-2 .
  14. Shulga N., Mosammaparast N., Wozniak R., Goldfarb D. S. // The Journal of Cell Biology. — 2000. — Vol. 149, no. 5. — P. 1027—1038. — . [ ]
  15. Pemberton L. F., Paschal B. M. // Traffic (Copenhagen, Denmark). — 2005. — Vol. 6, no. 3. — P. 187—198. — doi : . — . [ ]
  16. Stuurman N., Heins S., Aebi U. // Journal of Structural Biology. — 1998. — Vol. 122, no. 1-2. — P. 42—66. — doi : . — . [ ]
  17. Goldman A. E., Moir R. D., Montag-Lowy M., Stewart M., Goldman R. D. // The Journal of Cell Biology. — 1992. — Vol. 119, no. 4. — P. 725—735. — . [ ]
  18. Goldman R. D., Gruenbaum Y., Moir R. D., Shumaker D. K., Spann T. P. // Genes & Development. — 2002. — Vol. 16, no. 5. — P. 533—547. — doi : . — . [ ]
  19. Moir R. D., Yoon M., Khuon S., Goldman R. D. // The Journal of Cell Biology. — 2000. — Vol. 151, no. 6. — P. 1155—1168. — . [ ]
  20. Spann T. P., Goldman A. E., Wang Chen, Huang Sui, Goldman R. D. // The Journal of Cell Biology. — 2002. — Vol. 156, no. 4. — P. 603—608. — doi : . — . [ ]
  21. Ehrenhofer-Murray A. E. // European Journal of Biochemistry. — 2004. — Vol. 271, no. 12. — P. 2335—2349. — doi : . — . [ ]
  22. Grigoryev S. A., Bulynko Y. A., Popova E. Y. // Chromosome Research. — 2006. — Vol. 14, no. 1. — P. 53—69. — doi : . — . [ ]
  23. Schardin M., Cremer T., Hager H. D., Lang M. // Human Genetics. — 1985. — Vol. 71, no. 4. — P. 281—287. — . [ ]
  24. Lamond A. I., Earnshaw W. C. // Science . — 1998. — Vol. 280, no. 5363. — P. 547—553. — . [ ]
  25. Kurz A., Lampel S., Nickolenko J. E., Bradl J., Benner A., Zirbel R. M., Cremer T., Lichter P. // The Journal of Cell Biology. — 1996. — Vol. 135, no. 5. — P. 1195—1205. — . [ ]
  26. , с. 410.
  27. , p. 311, 313.
  28. Hernandez-Verdun D. // Histochemistry and Cell Biology. — 2006. — Vol. 125, no. 1-2. — P. 127—137. — doi : . — . [ ]
  29. Lamond A. I., Sleeman J. E. // Current Biology. — 2003. — Vol. 13, no. 21. — P. 825—828. — . [ ]
  30. , p. 235.
  31. , p. 239.
  32. Dundr M., Misteli T. // The Biochemical Journal. — 2001. — Vol. 356, Pt. 2. — P. 297—310. — . [ ]
  33. Lallemand-Breitenbach V., de Thé H. // Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. — 2010. — Vol. 2, no. 5. — P. a000661. — doi : . — . [ ]
  34. Lamond A. I., Spector D. L. // Nature Reviews. Molecular Cell Biology. — 2003. — Vol. 4, no. 8. — P. 605—612. — doi : . — . [ ]
  35. Tripathi K., Parnaik V. K. // Journal of Biosciences. — 2008. — Vol. 33, no. 3. — P. 345—354. — . [ ]
  36. Tripathi K., Parnaik V. K. // Journal of Biosciences. — 2008. — Vol. 33, no. 3. — P. 345—354. — . [ ]
  37. Handwerger K. E., Gall J. G. // Trends in Cell Biology. — 2006. — Vol. 16, no. 1. — P. 19—26. — doi : . — . [ ]
  38. . // UniProt: UniProtKB. Дата обращения: 30 августа 2013. 13 ноября 2012 года.
  39. Gall J. G., Bellini M., Wu Zheng’an, Murphy C. // Molecular Biology of the Cell. — 1999. — Vol. 10, no. 12. — P. 4385—4402. — . [ ]
  40. Matera A. G., Terns R. M., Terns M. P. // Nature Reviews. Molecular Cell Biology. — 2007. — Vol. 8, no. 3. — P. 209—220. — doi : . — . [ ]
  41. Fox A. H., Lam Yun Wah, Leung A. K. L., Lyon C. E., Andersen J., Mann M., Lamond A. I. // Current Biology. — 2002. — Vol. 12, no. 1. — P. 13—25. — . [ ]
  42. Fox A. H., Bond C. S., Lamond A. I. // Molecular Biology of the Cell. — 2005. — Vol. 16, no. 11. — P. 5304—5315. — doi : . — . [ ]
  43. , p. 274.
  44. Pollock C., Huang Sui. // Journal of Cellular Biochemistry. — 2009. — Vol. 107, no. 2. — P. 189—193. — doi : . — . [ ]
  45. , p. 264.
  46. , p. 288.
  47. , p. 300.
  48. , p. 301.
  49. Кассимерис Л., Лингаппа В. Р., Плоппер Д. . Клетки по Льюину. — М. : Лаборатория знаний, 2016. — С. 407. — 1056 с. — ISBN 978-5-906828-23-1 .
  50. Lehninger A. L., Nelson D. L., Cox M. M. . Lehninger Principles of Biochemistry. 3rd edition. — New York: Worth Publishers, 2000. — xxix + 1152 p.
  51. Moreno F., Ahuatzi D., Riera A., Palomino C. A., Herrero P. // Biochemical Society Transactions. — 2005. — Vol. 33, Pt. 1. — P. 265—268. — doi : . — . [ ]
  52. Görlich D., Kutay U. // Annual Review of Cell and Developmental Biology. — 1999. — Vol. 15. — P. 607—660. — doi : . — . [ ]
  53. Nicolini C. A. . Genome Structure and Function: From Chromosomes Characterization to Genes Technology. — Springer, 1997. — ISBN 0-7923-4565-7 .
  54. Izaurralde E., Adam S. // RNA (New York, N.Y.). — 1998. — Vol. 4, no. 4. — P. 351—364. — . [ ]
  55. Cole C. N., Scarcelli J. J. // Current Opinion in Cell Biology. — 2006. — Vol. 18, no. 3. — P. 299—306. — doi : . — . [ ]
  56. Boulikas T. // Critical Reviews in Eukaryotic Gene Expression. — 1995. — Vol. 5, no. 1. — P. 1—77. — . [ ]
  57. Steen R. L., Collas P. // The Journal of Cell Biology. — 2001. — Vol. 153, no. 3. — P. 621—626. — . [ ]
  58. Протисты: руководство по зоологии. Ч. 1 / Гл. ред. А. Ф. Алимов . — СПб. : Наука , 2000. — 679 с. — ISBN 5-02-025864-4 . — С. 157.
  59. Белякова Г. А., Дьяков Ю. Т., Тарасов К. Л. . Ботаника: в 4 т. Т. 2. — М. : Издат. центр «Академия», 2006. — 320 с. — ISBN 978-5-7695-2750-1 . — С. 145—146.
  60. , с. 121.
  61. , с. 34.
  62. Skutelsky E., Danon D. // Experimental Cell Research. — 1970. — Vol. 60, no. 3. — P. 427—436. — . [ ]
  63. Torous D. K., Dertinger S. D., Hall N. E., Tometsko C. R. // Mutation Research. — 2000. — Vol. 465, no. 1-2. — P. 91—99. — . [ ]
  64. Hutter K. J., Stöhr M. // Histochemistry. — 1982. — Vol. 75, no. 3. — P. 353—362. — . [ ]
  65. , с. 336.
  66. , с. 34, 42.
  67. Adam R. D. // Microbiological Reviews. — 1991. — Vol. 55, no. 4. — P. 706—732. — . [ ]
  68. Poxleitner M. K., Carpenter M. L., Mancuso J. J., Wang C. J., Dawson S. C., Cande W. Z. // Science . — 2008. — Vol. 319, no. 5869. — P. 1530—1533. — doi : . — . [ ]
  69. Cavalier-Smith T. // International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. — 2003. — Vol. 53, no. 6. — P. 1741—1758. — doi : . — . [ ]
  70. , с. 70, 91, 97—100.
  71. , с. 95, 181.
  72. , с. 34, 183, 336.
  73. , с. 150—151, 155, 345.
  74. Zettler L. A., Sogin M. L., Caron D. A. // Proc. Nat. Acad. Sci. USA . — 1997. — Vol. 94, no. 21. — P. 11411—11416. — . [ ]
  75. Карпов С. А. Строение клетки протистов. — СПб. : ТЕССА, 2001. — С. 257. — 384 с. — ISBN 5-94086-010-9 .
  76. Horton T. R. // Mycologia. — 2006. — Vol. 98, no. 2. — P. 233—238. — doi : . — . [ ]
  77. , с. 34, 216.
  78. Maheshwari R. // FEMS microbiology letters. — 2005. — Vol. 249, no. 1. — P. 7—14. — doi : . — . [ ]
  79. Aderkas P. von, Rouault G., Wagner R., Chiwocha S., Roques A. // Heredity. — 2005. — Vol. 94, no. 6. — P. 616—622. — doi : . — . [ ]
  80. Furness C. A., Rudall P. J. // Grana. — 2001. — Vol. 40, no. 1-2. — P. 17—25. — ISSN . — doi : . [ ]
  81. Rita L. Lees R. L., Heersche J. N. M. // American Journal of Physiology — Cell Physiology. — 2000. — Vol. 279, no. 3. — P. C751—C761. 30 марта 2017 года.
  82. McInnes A., Rennick D. M. // The Journal of Experimental Medicine. — 1988. — Vol. 167, no. 2. — P. 598—611. — . [ ]
  83. Goldring S. R., Roelke M. S., Petrison K. K., Bhan A. K. // The Journal of Clinical Investigation. — 1987. — Vol. 79, no. 2. — P. 483—491. — doi : . — . [ ]
  84. Pennisi E. // Science . — 2004. — Vol. 305, no. 5685. — P. 766—768. — doi : . — . [ ]
  85. Margulis L. . Symbiosis in Cell Evolution. — San Francisco: W. H. Freeman & Company, 1981. — 419 p. — ISBN 0-7167-1256-3 . — P. 206—227.
  86. López-García P., Moreira D. // BioEssays: News and Reviews in Molecular, Cellular and Developmental Biology. — 2006. — Vol. 28, no. 5. — P. 525—533. — doi : . — . [ ]
  87. Fuerst J. A. // Annual Review of Microbiology. — 2005. — Vol. 59. — P. 299—328. — doi : . — . [ ]
  88. Bell P. J. // Journal of Molecular Evolution. — 2001. — Vol. 53, no. 3. — P. 251—256. — doi : . — . [ ]
  89. Takemura M. // Journal of Molecular Evolution. — 2001. — Vol. 52, no. 5. — P. 419—425. — doi : . — . [ ]
  90. Villarreal L. P., DeFilippis V. R. // Journal of Virology. — 2000. — Vol. 74, no. 15. — P. 7079—7084. — . [ ]
  91. Bell P. J. // Journal of Theoretical Biology. — 2006. — Vol. 243, no. 1. — P. 54—63. — doi : . — . [ ]
  92. de Roos A. D. // Artificial Life. — 2006. — Vol. 12, no. 4. — P. 513—523. — doi : . — . [ ]
  93. Paradisi M., McClintock D., Boguslavsky R. L., Pedicelli C., Worman H. J., Djabali K. // BMC Cell Biology. — 2005. — Vol. 6. — P. 27. — doi : . — . [ ]
  94. Mounkes L. C., Stewart C. L. // Current Opinion in Cell Biology. — 2004. — Vol. 16, no. 3. — P. 322—327. — doi : . — . [ ]
  95. Rothfield N. F., Stollar B. D. // The Journal of Clinical Investigation. — 1967. — Vol. 46, no. 11. — P. 1785—1794. — doi : . — . [ ]
  96. Barned S., Goodman A. D., Mattson D. H. // Neurology. — 1995. — Vol. 45, no. 2. — P. 384—385. — . [ ]
  97. , p. 292.
  98. , p. 168.
  99. Goebel H. H., Warlo I. // Neuromuscular Disorders. — 1997. — Vol. 7, no. 1. — P. 13—19. — doi : . — . [ ]

Литература

  • Кассимерис Л., Лингаппа В. Р., Плоппер Д. . Клетки по Льюину. — М. : Лаборатория знаний, 2016. — 1056 с. — ISBN 978-5-906828-23-1 .
  • Хаусман К., Хюльсман Н., Радек Р. . Протистология / Пер. с англ. С. А. Карпова. Под ред. С. А. Корсуна. — М. : Товарищество научных изданий КМК, 2010. — 495 с. — ISBN 978-5-87317-662-5 .
  • / Ed. by Mark O. J. Olson. — N. Y. : Springer Science+Business Media , 2011. — xxvi + 414 p. — (Protein Reviews, vol. 15). — ISBN 978-1-4614-0514-6 . — doi : .
  • The Nucleus / Ed. by Tom Misteli, David L. Spector. — N. Y. : Cold Spring Harbor Perpectives in Biology, 2011. — 463 p. — ISBN 978-0-87969-894-2 .
  • / Ed. by Danton H. O’Day, Andrew Catalano. — Dordrecht: Springer Science+Business Media , 2013. — vi + 371 p. — ISBN 978-94-007-5818-6 . — doi : .
Источник —

Same as Клеточное ядро